Cinnamomum verum (TRAMIL)

De PlantUse Français
Aller à : navigation, rechercher
← Chenopodium ambrosioides
TRAMIL, Pharmacopée végétale caribéenne, 2014
Cissampelos pareira →
Cinnamomum verum arbre TRAMIL.jpg
Cinnamomum verum branche TRAMIL.jpg
Cinnamomum verum écorce TRAMIL.jpg
Cinnamomum verum troncs TRAMIL.jpg
Cinnamomum verum dessin TRAMIL.jpg


Cinnamomum verum J.S. Presl = Cinnamomum zeylanicum Blume
LAURACEAE



Noms vernaculaires significatifs TRAMIL

  • La Dominique : cinnamon
  • Haïti : kannèl
  • Rép. Dominicaine : canela
  • autres noms créoles : cannelle, cannelier, cannelier de Ceylan, pyé kannèl

Distribution géographique

Originaire d’Asie tropicale, cultivé dans les régions tropicales.

Description botanique

Arbre de 8-15 m, dont l’écorce est très aromatique. Feuilles opposées et sous-opposées, pouvant atteindre 15 cm, nettement trinervées depuis la base et presque jusqu’à la pointe, à la surface brillante, glabres, ovées à elliptico-lancéolées, arrondies à la base. Fleurs blanches-jaunes en panicules tombantes. Fruits de 1,7 cm terminés en pointe.

Vouchers :

  • Slane,528,SLNH
  • Jiménez,1509,JBSD

Emplois traditionnels significatifs TRAMIL

  • diarrhée : écorce, décoction, voie orale1
  • vomissements : écorce, décoction, voie orale2-3

Recommandations

Selon l’information disponible :

L’emploi contre la diarrhée et les vomissements est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL et l’information scientifique publiée.

En cas de diarrhée cet usage est considéré comme complémentaire à la réhydratation orale.

Si les vomissements ou la diarrhée persistent plus de 2 jours ou si l’état du patient se détériore (déshydratation avec langue sèche, pli cutané persistant, oligurie ou pleurs sans larmes) consulter un médecin immédiatement.

Éviter son ingestion en cas d’ulcère gastro-duodénal ou de gastrite, ou s’il y a des antécédents d’allergie à la plante.

En cas d’empoisonnement accidentel par ingestion d’huile essentielle ou d’une préparation la contenant, consulter un médecin.

Ne pas employer avec des enfants de moins de 8 ans, ni avec des femmes enceintes (risque d’avortement) ou allaitantes.

Ne pas utiliser plus de 3 jours consécutifs.

Chimie

L’écorce a été amplement étudiée et contient, entre autres composants, de l’huile essentielle (1-4%) : cinnamaldéhyde (65-90%), eugénol (4-10%), caryophyllène, linalol, l-phellandrène, p-cymène, furfural, acétate d’eugénol, alcool cinnamique et cinnamylique, méthyl-eugénol, benzaldéhyde, cinnamaldéhyde, acétate de cinnamyle; des tanins, des sucres, des coumarines, de la gomme, des résines, des diterpènes : cinceylanine et cinceylanol4-5.

Analyse proximale pour 100 g de l’écorce6 : calories : 305; eau : 11,8%; protéines : 3,1%; lipides : 1,2%; glucides : 80,6%; cendres : 3,3%; calcium : 470 mg; thiamine : 0,02 mg; riboflavine : 0,07 mg; niacine : 0,7 mg.

Activités biologiques

L’extrait alcoolique d’écorce a montré une activité antihelminthique in vitro contre Ascaris lumbricoides7. L’extrait éthanolique (80%) d’écorce a induit un effet antinociceptif dose dépendant sur la souris, dans les modèles de contorsions induites par acide acétique intrapéritonéal8.

On attribue à l’écorce une activité antifongique, antibactérienne9-10, nématicide11-12 et anticonvulsive13-14.

L’huile essentielle a provoqué une activité myorelaxante, dans les modèles expérimentaux de muscle lisse de trachée (DE50 = 41 mg/L) et d’iléon isolés de cobaye (DE50 = 12 mg/L)5. On attribue à l’huile essentielle un effet antiviral, carminatif, astringent, antiseptique4, antibactérien, antifongique15, anesthésique local, oestrogénique et relaxante sur le muscle lisse16-18.

Toxicité

Travail TRAMIL19

L’extrait aqueux (décoction) lyophilisé d’écorce, administré par voie orale, à 10 souris Swiss mâles (2 g/kg/jour) 5 jours par semaine (20 administrations), observés 7 jours après la fin du traitement, a provoqué la mort d’un animal 8 jours après la première administration après avoir présenté des signes de déshydratation 3 jours avant sa mort. Durant les 11 premiers jours, on a observé sur 90% des animaux un effet dépresseur : diminution de la réaction d’alarme, de l’activité motrice, piloérection et perte de poids). A partir du 12ème jour, les animaux ont récupéré sans manifestations de toxicité jusqu’à la fin de l’expérimentation. L’autopsie n’a montré aucune altération macroscopique des organes internes. L’extrait aqueux d’écorce (1%) a montré une activité mutagène sur le modèle Salmonella typhimurium (5-10 picolitres/disque)20.

Les extraits aqueux d’écorce obtenus avec de l’eau chaude ou par macération aqueuse (50 mg de solides totaux/disque) ont été négatifs sur le modèle de mutagénicité in vitro avec Bacillus subtilis H17 (rec +) et M45 (rec -). L’écorce crue et les résidus solides de ces deux extractions ont été mutagènes21.

Les extraits aqueux et alcoolique de l’écorce (50 μg/mL) in vitro ont induit une activité mitogénique, sur culture de tissus de lymphocytes11.

L’extrait éthanolique d’écorce (0,5, 1 et 3 g/kg) par voie orale sur la souris, n’a pas provoqué de signes évidents de toxicité ni de mort. Le même extrait administré quotidiennement pendant 90 jours (100 mg/kg) a induit une diminution du poids du foie et des niveaux d’hémoglobine, une augmentation du poids des organes reproducteurs ainsi que du nombre et de la mobilité des spermatozoïdes22.

L’extrait aqueux d’écorce (1%) par voie orale au chien a provoqué une irritation de la muqueuse gastrique, l’extrait salin à 0,66% n’a pas induit cette réaction23. L’extrait alcoolique (40 mg/2/jour/4 semaines/personne), administré par voie orale à 11 femmes et 4 hommes au cours d’un essais contrôlé, 7 femmes et 1 homme ayant reçu un placebo, a été bien toléré et n’a pas montré d’effet toxique, seulement 5 personnes ont reporté des effets secondaires mineurs24.

Quatre essais sur l’humain (2 essais aléatoires, un essai contrôlé et un essai pilote) n’ont pas montré d’effet toxique25.

Le contact répété avec l’écorce peut entraîner des réactions allergiques (dermatite de contact)26-27. On ne dispose pas d’information garantissant l’innocuité de son emploi médicinal avec des enfants ni avec des femmes enceintes ou allaitantes.

Préparation et dosage

L’écorce (bâtons) de Cinnamomum verum constitue un condiment de consommation humaine relativement répandu.

Contre la diarrhée ou les vomissements :

Préparer une décoction avec 3 grammes de bâton d’écorce dans 2 tasses (½ litre) d’eau, faire bouillir pendant 10 minutes dans un récipient couvert. Laisser refroidir, filtrer et boire une tasse 2 fois par jour.

La dose quotidienne moyenne d’écorce pour adultes est de 2 à 4 grammes28.

Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.

Références

  1. CHARLES C, 1988 TRAMIL survey. Movement for Cultural Awareness MCA, Roseau, Dominica.
  2. WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d’Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.
  3. GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.
  4. LEUNG A, 1980 Encyclopedia of common natural ingredients used in food, drugs and cosmetics. Hoboken, USA: Wiley Interscience Publication.
  5. NAMBA T, KIKUCHI T, MIKAGE M, KADOTA S, KOMATZU K, SHMIZU M, TOMIMORI T, 1987 Studies on the natural medicinal resources from Sri Lanka (1). On anatomical and chemical differences among each grade of Cinnamomi veri cortex. Shoyakugaku Zasshi 41(1):35-42.
  6. DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Raton, USA: CRC Press. p44.
  7. RAJ RK, 1975 Screening of indigenous plants for antihelmintic action against human Ascaris lumbricoides: Part II. Indian J Physiol Pharmacol 19(1):47-49.
  8. ATTA AH, ALKOFAHI A, 1998 Anti-nociceptive and antiinflammatory effects of some Jordanian medicinal plant extracts. J Ethnopharmacol 60(2):117-124.
  9. SHARMA A, GHANEKAR AS, PADWAL-DESAI SR, NADKARNI GB, 1984 Microbiological status and antifungal properties of irradiated spices. J Agric Food Chem 32(5):1061-1063.
  10. GEORGE M, PETALAI K, 1949 Investigations on plant antibiotics. Part IV. Further search for antibiotic substances in Indian medicinal plants. Indian J Med Res 37:169-181.
  11. NAMBA T, SAWA K, GEWALI MB, HATTORI M, NARUSE Y, KAGAMIMORI S, 1989 Studies on development of immunomodulating drugs (II). Effect of Ayurvedic medicines on blastogenesis of lymphocytes from mice. Shoyakugaku Zasshi 43(3):250-255.
  12. KIUCHI F, NAKAMURA N, MIYASHITA N, NISHIZAWA S, TSUDA Y, KONDO K, 1989 Nematocidal activity of some anthelmintic traditional medicines and spices by a new assay method using larvae of Toxocara canis. Shoyakugaku Zasshi 43(4):279-287.
  13. SUGAYA E, ISHIGE A, SEKIGUCHI K, IIZUKA S, SUGIMOTO A, YUZURIHARA M, HOSOYA E, 1988 Inhibitory effect of a mixture of herbal drugs TJ-960 (SK) on pentylenetetrazol-induced convulsions in mice. Epilepsy Res 2(5):337- 339.
  14. SUGAYA E, ISHIGE A, SEKIGUCHI K, IIZUKA S, ITO K, SUGIMOTO A, ABURANDA M, HOSOYA E, 1988 Inhibitory effect of TJ-960 (SK) on pentylenetetrazol-induced EEG power spectrum changes. Epilepsy Res 2(1):27-31.
  15. RAHARIVELOMANANA PJ, TERROM GP, BIANCHINI JP, COULANGES P, 1989 Study of the antimicrobial action of various essential oil extracts from Madagascar plants. II. The Lauraceae. Arch Inst Pasteur Madagascar 56(1):261-271.
  16. REITER M, BRANDT W, 1985 Relaxant effects of terpenoid on tracheal and ileal smooth muscles of the guinea pig. Arzneim-Forsch 35(1):408-414.
  17. SUGAYA E, TSUDA T, SUGAYA E, USAMI M, TAKAMURA K, 1979 Local anaesthetic action of the Chinese medicine Saiko-Keishi-To. Planta Med 37:274-276.
  18. HARRIES N, JAMES KC, PUGH WK, 1978 Antifoaming and carminative actions of volatile oil. J Clin Pharmacol 2:171-177.
  19. GARCIA-GONZÁLEZ M, BARBOZA CJ, 2005 Toxicidad aguda dosis repetida, en ratones, del extracto acuoso (decocción) de las astillas de Cinnamomum verum . Informe TRAMIL. PRONAPLAMED. Depto de Fisiología, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.
  20. SIVASWAMY SN, BALACHANDRAN B, BALANEHRU S, SIVARAMAKRISHNAN VM, 1991 Mutagenic activity of south Indian food items. Indian J Exp Biol 29(8):730-737.
  21. UNGSURUNGSIE M, SUTHIENKUL O, PAOVALO C, 1982 Mutagenicity screening of popular Thai species. Food Chem Toxicol 20(5):527-530.
  22. SHAH AH, AL-SHARCEF AH, AGEEL AM, QURESHI S, 1998 Toxicity studies on mice of common species: Cinnamomum zeylanicum bark and Piper longum fruits. Plant Foods Hum Nutr 52(3):231-239.
  23. SANCHEZ-PALOMERA E, 1951 Concept of the mucous barrier and its significance. Gastroenterology 18:269-286.
  24. NIR Y, POTASMAN I, STERMER E, TABAK M, NEEMAN I, 2005 Controlled trial of the effect of cinnamon extract on Helicobacter pylori. Helicobacter 5(2):94-97.
  25. NATURAL STANDARD MONOGRAPH 2007 Cinnamon (Cinnamomum spp.). www.naturalstandard.com (12jan2012)
  26. SEETHARAM K, PASRICHA J, 1987 Condiments and contact dermatitis of the finger-tips. Indian J Dermatol Venereol Leprol 53(6):325-328.
  27. STAGER J, WUTHRICH B, JOHANSSON S, 1991 Spice allergy in celery-sensitive patients. Allergy 46(6):475-478.
  28. World Health Organization, 1999 Cortex Cinnamomi. WHO monographs on selected medicinal plants. Vol. I. Geneva, Switzerland: WHO. pp95-104.
Récupérée de « https://uses.plantnet-project.org/f/index.php?title=Cinnamomum_verum_(TRAMIL)&oldid=302343 »