Curcuma longa (TRAMIL)

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TRAMIL, Pharmacopée végétale caribéenne, 2014
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Curcuma longa L. = Curcuma domestica Valeton
ZINGIBERACEAE



Noms vernaculaires significatifs TRAMIL

  • Haïti : safran, curcuma
  • Sainte Lucie : tjitjima, turmeric, Indian saffron
  • autres noms créoles : kalpata, mandja, safran kouli, safran péyi

Distribution géographique

Originaire d’Asie tropicale, devenue pan-tropicale par culture.

Description botanique

Herbacée acaule, de 60 à 90 cm. Tubercules gros, cylindriques ou ellipsoïdaux, jaunes à l’intérieur. Feuilles oblongues ou elliptiques, de 30 à 50 cm, acuminées. Epis cylindriques de 10 à 20 cm, sur une hampe de 12 cm; bractées vert pâle, les supérieures sont rosées; fleurs jaune pâle.

Voucher : Jiménez,685,JBSD

Emplois traditionnels significatifs TRAMIL

  • abcès : rhizome, décoction, voie orale1
  • jaunisse : rhizome, décoction avec du sel, voie orale2 ; rhizome, macération aqueuse, voie orale2
  • troubles hépatiques : rhizome, macération aqueuse, voie orale2

Recommandations

Selon l’information disponible :

L’emploi contre les abcès est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL et les études de toxicité.

Si l’état du patient se détériore, ou si l’abcès persiste plus de 5 jours chez un adulte ou plus de 3 jours chez un enfant, consulter un médecin.

L’emploi contre la jaunisse et les troubles hépatiques est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité, la validation et l’information scientifique publiée.

À cause du risque que représentent pour la santé la jaunisse et les affections hépatiques, on recommande un examen médical préalable. L’emploi de ce remède doit être considéré comme complémentaire du traitement médical, sauf contre-indication.

Si l’état du patient se détériore, ou si les symptômes hépatiques durent plus de 5 jours chez un adulte ou plus de 3 jours chez un enfant de moins de 5 ans, consulter un médecin.

Ne pas administrer à des patients souffrant d’obstructions des voies biliaires (calculs, par exemple), sauf s’ils sont placés sous surveillance médicale, ni à des personnes ayant des antécédents d’hypersensibilité à la plante ou immunodéficientes.

La poudre du rhizome peut provoquer des réactions d’hypersensibilité au contact de la peau.

Ne pas employer avec des femmes ayant l’intention de procréer, ni avec des femmes enceintes ou allaitantes, ni avec des enfants de moins de 3 ans.

Chimie

Le rhizome contient des quinoïdes : 2-hydroxyméthylanthraquinone3; des sesquiterpènes : alantones, bisabolène4, bisacumol, bisacurone5, caryophyllène, curcumène6, curcuménone5; des stéroïdes : cholestérol, campestérol, stigmastérol7; des monoterpènes : cinéole8, camphène, terpinène6; des phénylpropanoïdes : acide cafeïque, acide cumarique9, 4-hydroxy-cinnamoyl- méthane10; des lignanes : iso-procurcuménol5, 4-hydroxy-cinnamoyl-(féruloxyl)méthane11; des benzénoïdes : curcumine et dérivés12, gaïacol13; des glucides : ukonane A14; des alcaloïdes15; de l’huile essentielle : turmérone, déshydroturmérone, gingibérène16, atlantone, curcuménol, bornéol, camphre, terpinène16. La plante contient aussi des curcumines17-18: desméthoxycurcumine; des acides gras : acide caprylique; du 1-phénylhydroxy-N-pentane19 et des polysaccharides20.

Analyse proximale pour 100 g de rhizome21: calories : 354; eau : 11,4%; protéines : 7,8%; lipides : 9,9%; glucides : 64,9%; fibres : 6,7%; cendres : 6%; calcium : 182 mg; phosphore : 268 mg; fer : 41,4 mg; sodium : 38 mg; potassium : 25 mg; carotène : 0 μg; thiamine : 0,15 mg; riboflavine : 0,23 mg; niacine : 5,14 mg; acide ascorbique : 26 mg.

Activités biologiques

Travail TRAMIL22

L’extrait aqueux (décoction) de rhizome à une concentration de 1000 μg/mL, n’a pas montré d’activité antimicrobienne in vitro contre Staphylococcus aureus.

Travail TRAMIL23

L’extrait aqueux (infusion de 15 minutes et macération pendant 4 heures) de rhizome, in vitro, avec les hépatocytes isolés de rat expérimentalement intoxiqués par terbutyl hydroperoxyde (TBH), lors de l’épreuve d’inhibition du radical diphénylpicrylhydrazyle (DPPH), à des doses ≥ 0,5 mg de matériel végétal sec/mL de suspension, a protégé contre la nécrose cellulaire induite par le TBH, sans modifier la lipopéroxydation. L’activité contre les radicaux libres a été très faible.

Le rhizome a présenté des propriétés hépatoprotectrices19 et cytostatiques sur des modèles expérimentaux in vitro24-25 et in vivo chez la souris pour des doses de 100 mg/kg26.

Le rhizome en poudre (500 mg, 4 fois/jour/1 semaine) par voie orale a eu des effets significativement positifs sur 116 patients avec dyspepsie acide, flatulente et atonique lors d’un essai en double-aveugle réalisé de manière aléatoire27.

La curcumine est un pigment jaune potentiellement capable de protéger le rat de l’hépatotoxicité provoquée par le paracétamol28.

Toxicité

Travail TRAMIL29

L’extrait aqueux (macération à 3,27%) lyophilisé de rhizome frais, (66,67 mg/mL d’eau), par voie orale à la souris Hsd:ICR (10 mâles et 10 femelles) de 21,19 ± 1,95 g, durant 65 jours, selon le protocole EPA.OPPTS.870.3100, n’a provoqué aucun signe de toxicité ni mortalité durant l’essai ni les 14 jours d’observation qui ont suivi (Test de Irwing). Pas de modification de la courbe de croissance. L’autopsie n’a montré aucune altération macroscopique des organes internes. Le groupe témoin de mêmes caractéristiques a reçu de l’eau distillée (0,5 mL/20 g de souris).

Le rhizome sec ajouté à la ration alimentaire (5%) du rat Wistar femelle durant 14 jours n’a pas montré de signes d’hépatotoxicité, en revanche au cours des 90 jours suivant, on a observé une réduction de la courbe de poids normale et des nécroses focales du foie30. Le rhizome ajouté à la ration alimentaire (0,5%) quotidienne du rat pendant 3 mois n’a pas modifié l’ingestion d’aliments ni la prise de poids; on n’a pas détecté non plus de changements histologiques31. L’extrait aqueux de rhizome sec (10 mg/kg), par voie orale durant 6 mois à des rats des deux sexes n’a pas montré de signes évidents de toxicité chronique32.

L’extrait aqueux de rhizome sec (1 g/kg/21 jours), par voie orale au rat mâle, a montré des signes de toxicité générale32.

La DL50 de l’extrait aqueux de rhizome par voie intrapéritonéale chez la souris a été de 430 mg/kg33. L’extrait éthanolique (80%) de rhizome frais (jusqu’à 3 g/kg) par voie orale à la souris durant 24 heures, n’a pas montré de signes évidents de toxicité34.

L’extrait éthanolique de rhizome (0,5, 1 ou 3 g/kg), par voie orale à la souris, lors d’une étude de toxicité aiguë et chronique (100 mg/kg/jour) sur 90 jours n’a pas provoqué de prise de poids de manière significative, ni changement significatif du poids du coeur et des poumons. Les études hématologiques ont révélé une diminution significative des leucocytes et des hématies, chez les animaux traités avec Curcuma longa en rapport avec les témoins. Une prise de poids au niveau des organes sexuels et une augmentation spermatique (mobilité et quantité) ont été observées chez la souris mâle. Aucun effet spermatotoxique n’a été mis en évidence35. L’extrait éthanolique (50%) de rhizome sec (4 mg/kg) par voie orale à la souris durant 4 semaines, n’a pas montré de signes évidents de toxicité subchronique sur l’appétit, la prise de poids ni sur le système nerveux central36. Le contact dermique avec la poudre du rhizome peut entraîner des réponses allergéniques, en cas de contacts répétés37.

On ne dispose pas d’information garantissant l’innocuité de son emploi médicinal avec des enfants, ni avec des femmes enceintes ou allaitantes.

Préparation et dosage

Le rhizome de Curcuma longa constitue un condiment de consommation humaine relativement répandue et une source industrielle d’huile essentielle.

Contre les abcès :

Préparer une décoction 20 grammes de rhizome dans 4 tasses (1 litre) d’eau, faire bouillir 10 minutes dans un récipient couvert. Laisser refroidir, filtrer et boire 1 tasse 3-4 fois par jour.

Contre la jaunisse et les troubles hépatiques :

Hacher menu 20 grammes de rhizome et les ajouter à 4 tasses (1 litre) d’eau bouillie, laisser reposer pendant 12 heures. Filtrer et boire en plusieurs prises au cours des 12 heures suivantes38.

Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.

Références

  1. JEAN-PIERRE L, 1988 TRAMIL survey. St. Lucia National Herbarium, Castries, St. Lucia.
  2. WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d’Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.
  3. OGBEIDE ON, EDUAVEGUAVOEN OI, PARVEZ M, 1985 Identification of 2-(hydroxymethyl) anthraquinone in Curcuma domestica. Pak J Sci 37(1/4):15-17.
  4. SU HCF, HORVAT R, JILANI G, 1982 Isolation, purification, and characterization of insect repellents from Curcuma longa L. J Agric Food Chem 30:290-292.
  5. OHSHIRO M, KUROYANAGI M, UENO A, 1990 Structures of sesquiterpenes from Curcuma longa. Phytochemistry 29(7):2201-2205.
  6. CHEN YH, YU JG, FANG HJ, 1983 Studies on Chinese Curcuma. III. Comparison of the volatile oil and phenolic constituents from the rhizome and the tuber of Cucurma longa. Chung Yao T’ung Pao 8(1):27-29.
  7. MOON CK, PARK NS, KOH SK, 1976 Studies on the lipid components of Curcuma longa. I. The composition of fatty acids and sterols. Soul Taehakkyo Yakhak Nonmunjip 1:132.
  8. YASUDA K, TSUDA T, SHIMIZU H, SUGAYA A, 1988 Multiplication of Curcuma species by tissue culture. Planta Med 54(1):75-79.
  9. SCHULTZ JM, HERRMANN K, 1980 Occurrence of hydroxybenzoic acids and hydroxycinnamic acid in spices. IV. Phenolics of spices. Z Lebensm-Unters Forsch 171:193-199.
  10. PARK SN, BOO YC, 1991 Cell protection from damage by active oxygen with curcuminoids. Patent-Fr Demande-2,655,054.
  11. TODA S, MIYASE T, ARICHI H, TANIZAWA H, TAKINO Y, 1985 Natural antioxidants. III. Antioxidative components isolated from rhizome of Curcuma longa L. Chem Pharm Bull 33(4):1725-1728.
  12. JENTZSCH K, SPIEGL P, KAMITZ R, 1970 Qualitative and quantitative studies of curcuma dyes in different Zingiberaceae drugs. 2. Quantitative studies. Sci Pharm 38(1):50-58.
  13. KARIG F, 1975 Rapid identification of curcuma rhizomes with the tas (thermomicroseparation and application) process. Dtsch Apoth Ztg 115(10):325-328.
  14. GONDA R, TOMODA M, TAKADA K, OHARA N, SHIMIZU N, 1992 The core structure of ukonan A, a phagocytosis-activating polysaccharide from the rhizome of Curcuma longa, and immunological activities of degradation products. Chem Pharm Bull 40(4):990-993.
  15. WOO WS, CHI HJ, YUN HS, WOO LK, 1977 Phytochemical screening of Korean medicinal plants (II). Korean J Pharmacog 8:103-108.
  16. DE SOUSA M, MATOS ME, MATOS FJ, MACHADO MI, CRAVEIRO AA, 1991 Constituintes químicos ativos de plantas medicinais Brasileiras. Laboratorio de produtos naturais, Fortaleza, Brasil: Ceará Edições UFC.
  17. YANG M, DONG X, TANG Y, 1984 Studies of the chemical constituents of common turmeric (Curcuma longa). Chung Ts’ao Yao 15(5):197-198.
  18. ZHAO DY, YANG MK, 1986 Separation and determination of cucurminoids in Curcuma longa L. and its preparation by HPLC. Yao Hsueh Pao 21(5):382-385.
  19. KISO Y, SUZUKI Y, WATANABE N, OSHIMA Y, HIKINO H, 1983 Antihepatotoxic principles of Curcuma longa rhizomes. Planta Med 49(3):185-187.
  20. GONDA R, TOMODA M, SHIMIZU N, KANARI M, 1990 Characterization of polysaccharides having activity on the reticuloendothelial system from the rhizome of Curcuma longa. Chem Pharm Bull Tokyo 38(2):482-486.
  21. DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Raton, USA: CRC Press. p56.
  22. SOLIS PN, RODRIGUEZ N, ESPINOSA A, GUPTA MP, 2004 Estudio antimicrobiano de algunas plantas TRAMIL con usos en Martinica. Informe TRAMIL. Centro de Investigaciones Farmacognósticas de la Flora Panameña CIFLORPAN, Facultad de Farmacia, Universidad de Panamá, Panamá, Panamá.
  23. JOYEUX M, FLEURENTIN J, DORFMAN P, MONTIER F, 1988 Recherche d’une activité hépatotrope et antiradicalaire de plantes médicinales de la caraïbe. Rapport TRAMIL. Laboratoire de pharmacognosie, Centre des Sciences pour l’Environnement, Metz, France.
  24. CHANG IM, WOO WS, 1980 Screening of Korean medicinal plants for antitumor activity. Arch Pharm Res 3(2):75-78.
  25. KOSUGE T, YOKOTA M, SUGIYAMA K, YAMAMOTO T, NI MY, YAN SC, 1985 Studies of antitumor activities and antitumor principles of Chinese herbs. Yakugaku Zasshi 105(8):791-795.
  26. ITOKAWA H, 1988 Research on antineoplastic drugs from natural sources, especially from higher plants. Yakugaku Zasshi 108(9):824-841.
  27. 4 WHO, 2002 WHO monographs on selected medicinal plants. Volume 1. www. who.int/medicines/library/trm/medicinalplants/pdf/259to266.pdf (28Feb2003).
  28. DONATUS IA, SARDJOKO, VERMEULEN NPE, 1990 Cytotoxic and cytoprotective activities of curcumin. Effects on paracetamol induced cytotoxicity, lipid peroxidation and glutathione depletion in rat hepatocytes. Biochem Pharmacol 39(12):1869-1875.
  29. PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2006 Toxicidad oral subcrónica, dosis repetida, en ratón, del extracto de rizoma fresco de Curcuma longa. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, LEBi, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.
  30. DESHPANDE SS, LALITHA VS, INGLE AD, RASTE AS, GADRE SG, MARU GB, 1998 Subchronic oral toxicity of turmeric and ethanolic turmeric extract in female mice and rats. Toxicol Lett 95(3):183-193.
  31. POLASA K, SESIKARAN B, KRISHNA TP, KRISHNASWAMY K, 1991 Turmeric (Curcuma longa) - induced reduction in urinary mutagens. Food Chem Toxicol 29(10):699-706.
  32. CHAVALITTUMRONG P, CHIVAPAT S, RATTANAJARASROJ S, PUNYAMONG S, CHUTHAPUTTI A, PHISALAPHONG C, 2002 Chronic toxicity study of curcuminoids in rats. Songklanakarin J Sci Technol 24(4):633-647.
  33. YEGNANARAYANA M, SARAF AP, BALWANI JH, 1976 Comparison of anti-inflammatory effect of various extracts of Curcuma longa. Indian J Med Res 64(4):601-608.
  34. GILANI AH, SHAH AJ, GHAYUR MN, MAJEED GK, 2005 Pharmacological basis for the use of turmeric in gastrointestinal and respiratory disorders. Life Sciences 76(26):3089-3105.
  35. QURESHI S, SHAH AH, AGEEL AM, 1992 Toxicity studies on Alpinia galanga and Curcuma longa. Planta Med 58(2):124-127.
  36. MIQUEL J, MARTINEZ M, DIEZ A, DE JUAN E, SOLER A, RAMIREZ A, LABORDA J, CARRISON M, 1995 Effects of turmeric on blood and liver lipoperoxide levels of mice: lack of toxicity. Age(Chester Pa) 18(4):171-174.
  37. SEETHARAM KA, PASRICHA JS, 1987 Condiments and contact dermatitis of the finger-tips. Indian J Dermatol Venereol Leprol 53(6):325-328.
  38. ALBORNOZ A, 1993 Medicina Tradicional Herbaria. Caracas, Venezuela: Editorial Instituto Farmacoterápico Latino S.A. p227.
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