Allium sativum (TRAMIL)

De PlantUse Français
Aller à : navigation, rechercher
← Allium cepa
TRAMIL, Pharmacopée végétale caribéenne, 2014
Allium schoenoprasum →


Allium sativum L.
AMARYLLIDACEAE



Noms vernaculaires significatifs TRAMIL

  • Barbade, Haïti, Les Saintes et Sainte Lucie : lay
  • Guatémala, Rép. Dominicaine : ajo

Distribution géographique

D’origine eurasiatique, cultivée partout dans le monde.

Description botanique

Plante herbacée à bulbes divisés et enveloppés d’une peau blanchâtre. Feuilles planes, de 2-3 cm de largeur. Inflorescence en hampe d’environs 50 cm; ombelle dense; fleurs rosées avec ovaire oblong-ovoïde.

Vouchers :

  • Faujour,14,BAR
  • Girón,254,CFEH
  • Jiménez,1519,JBSD
  • Fuentes,4635,ROIG
  • Boulogne,TB1&TH2,UAG

Emplois traditionnels significatifs TRAMIL

  • affections cutanées, prurit, candidose : bulbe, pilé, bain et friction1
  • mal de dent : bulbe, nature, application locale1-2
  • douleur d’oreille : bulbe pilé, cataplasme, application locale3
  • fièvre : bulbe pilé, décoction, voie orale3
  • mala sangre (stress) : bulbe, pilé, application sur le front2
  • parasites intestinaux : bulbe, décoction, voie orale4,7
  • lourdeurs d’estomac, nausées, flatulence : bulbe, décoction, voie orale1-6, 7

Recommandations

Selon l’information disponible :

L’emploi contre affections cutanées, prurit, candidose, mal de dent, douleur d’oreille est classé REC, basé sur l’emploi significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité et l’information scientifique publiée.

Toute application locale doit se conformer à de strictes mesures d’hygiène pour empêcher la contamination ou une infection surajoutée.

Si l’état du patient se détériore ou que les affections cutanées, le prurit, la candidose persistent plus de 5 jours chez l’adulte et 3 jours chez l’enfant, ou que le mal de dent plus de 3 jours ou que les douleurs d’oreille persistent pendant plus de 2 jours, consulter un médecin.

Les douleurs d’oreille pouvant être dues à une otite médiane ou interne, il est recommandé de consulter d’abord un médecin. Son emploi est contre-indiqué en présence de sécrétions à l’intérieur de l’oreille et/ou une éventuelle perforation du tympan.

L’emploi contre la fièvre est classé REC sur la base de l’emploi significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité, de validation et l’information scientifique publiée.

Si l’état du patient se détériore ou que la fièvre persiste pendant plus de 2 jours, consulter un médecin.

Nous ne disposons pas d’un modèle d’expérimentation adéquat pour valider la mala sangre (stress), qui puisse valider cet emploi traditionnel.

L’emploi contre les parasites intestinaux, les lourdeurs d’estomac, les nausées et la flatulence est classé REC sur la base de l’emploi significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité et l’information scientifique publiée.

L’usage du bulbe peut produire des réactions d’hypersensibilité par voie orale et topique avec des effets anaphylactiques8. Il possède un effet anticoagulant et il est conseillé de suspendre son utilisation avant toute chirurgie ou intervention odontologique8-9. Il peut causer une gastroentérite10 et provoquer un reflux oesophagique10.

Son emploi est contre-indiqué en cas d’hyperthyroïdisme11, en cas d’inflammation stomacale aigüe ou chronique ou en cas d’une irritation significative ou d’inflammation d’autres muqueuses10. Il est également contre indiqué pour les personnes ayant un traitement hypoglycémiant (oral ou insuline)12-13, anticholestérolémique, antihypertensif8,10, anticoagulant8-14, anti-inflammatoire non stéroïdien (ibuprofène, naproxène) et avec des plantes ou complément alimentaire tel que le Ginkgo biloba à cause du risque d’hémorragie8.

L’emploi du bulbe interagit avec des médicaments anticholestérolémiques (lovastatine ou autres « statines » inhibiteurs de l’HMGCoA réductase) en accroissant leur effet14 et en diminuant la concentration plasmatique des antirétroviraux13.

Le bulbe par voie orale peut provoquer l’irritation des voies urinaires sur des personnes présentant une sensibilité spécifique15.

L’efficacité du médicament saquinavir, utilisée dans le traitement du VIH, peut être réduit si l’on consomme de l’ail16. Son influence sur d’autres médicaments antiviraux comme le ritonavir17 n’a pas été démontrée ni non plus l’altération des quantités de médicaments métabolisés par le système enzymatique CYP450 du foie18. Plusieurs études ont suggéré qu’il peut causer des contractions utérines8,10.

Ne pas administrer pendant la grossesse car susceptible de causer un avortement, en période d’allaitement ni à des enfants de moins de 3 ans.

Chimie

colspan="x"  rowspan="x"

Le bulbe contient :

Métabolites secondaires et/ou substances chimiques Quantité Réf.
alcaloïdes 19-22
acide nicotinique
trigonelline 100-890 ppm
glucides 27,4% 21-24
fructanes d’allium
pectines
acide phytique 3000 ppm

|- |colspan="2" | || || || 


        diterpènes : l’acide gibbérellique ou gibbérelline A-3 et A-7 25 lipides : 19, 21, acide arachidonique, 22, 26 cérébrosides acide linoléique 1200-7800 ppm acide myristique 614 ppm acide oléique 60-1200 ppm acide palmitique 400-3600 ppm monoterpènes : 22 β-phellandrène α-phellandrène phénilpropanoïdes : acide caféique 10-20 ppm acide férulique 7-27 ppm tacide p-cotumarique 2-58 ppm acide sinapique (acide hydroxycinnamique) 2 ppm β-sitostérol 13-555 ppm 22 composés sulfurés : 22, 27, acide 2-propène- 28-30 1- sulfonitrique ester de l’acide-2- propène- 1-sulfonate-2- propényl ajoène et dérivés trisulfure de méthylallyle et dérivés disulfure de méthylallyle et dérivés alliine 1500-27800 ppm allyle-1-propénylthiosulfinate cycloalliine et dérivés disulfure de diallyle et dérivés 16-643 ppm disulfure de diallyle 2-99 ppm tétrasulfure de diallyle 119 ppm présence d’aldéhydes : particulièrement acétaldéhyde 22 alcool allylique benzoïdes : acide-p- hydroxybenzoïque 13 ppm acide vanillique 6 ppm flavonoïdes : 22 apigénine (un citroflavonoïde) 693 ppm myricétine 693 ppm quercitrine 0,08-200 ppm prostaglandines 21 terpénoïdes : citral, géraniol, linalol phloroglucinol 22 5-butyl-cystéine-sulfoxyde et dérivés (aminoacides sulfurés) 21-22, 29 glycine 2000-4800 ppm 31 alliine (aminoacides sulfurés) 13000 ppm tryptophane endolysine 0,096 ppm muramidase 0,096 ppm salicylates 1-4 ppm 22 acide salicylique 1 ppm saponines : 22, 32 éruboside et dérivés 33 éruboside-B 0,5-13 ppm sativoside et tigonine vitamines : 21-22 acide ascorbique 100-788 ppm biotine 22 ppm allithiamine 0-3 ppm acide pantothénique 2,6-7,5 ppm niacine 4-17 ppm thiamine 0-8 ppm

Analyse proximale de 100 g du bulbe21 : calories : 117 ; eau : 67,8% ; protides : 3,5% ; lipides : 0,3% ; glucides : 27,4% ; fibres : 0,7% ; cendres : 1%; calcium : 18 mg ; phosphore : 88 mg; fer : 1.5 mg; sodium : 18 mg ; potassium : 373 mg; carotène : 0 μg ; thiamine : 0,24 mg ; riboflavine : 0,05 mg ; niacine : 0,4 mg ; acide ascorbique : 10 mg.

Activités biologiques

Travail TRAMIL34

L’extrait aqueux (décoction 30%) de bulbe frais pilé, (1 et 5 g de matériel végétal/kg), par voie orale au rat Wistar mâle, 8 animaux/groupe, modèle de fièvre induite par levure de bière (15% dans de l’eau; 1 mL/100 g) par voie sous-cutanée, le témoin a reçu du paracétamol (150 mg/kg p.o.) et chaque animal a été son propre contrôle. Il y a eu une activité antipyrétique statistiquement significative jusqu’à la troisième heure suivant l’administration des deux doses, le paracétamol présenta un effet significatif pendant les 4 h de l’évaluation. L’extrait aqueux du bulbe a été actif in vitro contre Escherichia coli et Staphylococcus aureus35.

L’extrait aqueux de bulbe frais, in vitro par la méthode de dilution sur plaque d’agar-agar, a inhibé la croissance de Candida albicans et autres Candida sp. ainsi que celle de 35 souches de plusieurs dermatophytes36.

L’extrait hydroalcoolique (50%) de bulbe frais pilé (20 ou 50% poids/volume), en concentrations de 50 et 100 μL/ puits, a montré une activité significative in vitro contre Staphylococcus aureus et Escherichia coli37.

L’extrait hydrométhanolique (50%)38 et la teinture éthanolique (10%)41 du bulbe séché (30 μL/ disque) ont montré une activité contre des microorganismes gram + et gram -. La teinture a aussi été active contre Staphylococcus aureus39.

Le bulbe, in vitro, a montré une activité antifongique sur dermatophytes et levures pathogènes de l’homme40, inhibition de Candida albicans41.

L’extrait aqueux du bulbe, in vitro, sur plaque d’agaragar, a montré un effet antifongique contre Microsporum gypseum42, Trichophyton rubrum (0,5%)43 et Candida albicans (0,8 mg/mL)42.

L’extrait hydroalcoolique (50%) de bulbe frais pilé (20 ou 50% poids/volume), en concentrations de 50 et 100 μL/puits, a montré une activité significative in vitro face à Candida albicans, Epidermophyton floccosum et Trichophyton rubrum37.

Le jus du bulbe, appliqué par voie topique sur le lapin, a montré une activité antifongique sur Microsporum canis44 et sur les genres Epidermophyton et Trychosporum37. L’extrait hydroalcoolique (50%) du bulbe séché pilé (20- 50% poids/volume), en application topique 2 fois par jour pendant 4 semaines, sur 60 patients par groupe (15-60 ans) des deux sexes, avec diagnostic mycologique (direct et par culture) de dermatophytes, a montré un effet antimycosique significatif, en comparaison avec l’acide salicylique 3% comme témoin45.

L’extrait du bulbe (20%) appliqué 2 fois/jour/10 à 20 jours, sur 6 adultes humains affectés par Trichophyton rubrum et T. mentagrophytes a montré un effet antimycosique46. L’huile à base de gousse d’ail pilée, en application locale, est connue comme analgésique otique et la gousse d’ail mordue sur une carie afin de l’obturer, est utilisée pour contrecarrer le mal de dent47.

L’extrait aqueux de bulbe, in vitro, mais pas in vivo sur rat, a montré une activité antihelminthique contre des cestodes (Hymenolepis diminuta, H. microstoma, Taenia taeniaeformis) et des trématodes (Fasciola hepatica, Echinostoma caproni)48.

La concentration minimum létale (CML), in vitro, sur le cestode intestinal adulte Hymenolepis nana adulte de l’extrait cru d’ail en dilutions en série, a été de 1/2049. Le bulbe d’ail, administré sur souris albinos avant et après l’inoculation avec un plathelminthe intestinal Schistosoma mansoni. Après 7 semaines l’autopsie, la parasitologie du foie et de l’iléon et l’ultra-structure des parasites récoltés ont été analysés. Une réduction de la quantité d’oeufs, de la quantité de parasites vivants et plusieurs altérations ultra structurelles du tégument incluant interruption, oedème, vésiculations, ulcères et vacuolisation des autres structures ont été observé. Cette étude suggère que A. sativum est un agent utile en tant que prophylactique et thérapeutique contre l’infection de S. mansoni50. L’extrait aqueux (1 g/mL) du bulbe, voie orale (50 mg/kg de poids corporel pendant 2 semaines), à 8 souris Swiss mâles, a présenté une activité antiparasitaire contre Cryptosporidium sp.51.

Le bulbe cru, (5 mL/100 mL d’eau) par voie orale deux fois par jour pendant trois jours, à 10 enfants infectés par un cestode intestinal Hymenolepis nana et à 26 autres infectés par un protozoaire intestinal Giardia lamblia a été efficace et sans signes de toxicité49.

Le bulbe administré par voie orale (0.64 g/personne) 2 fois/jour/2 semaines, à 29 patients présentant des lourdeurs d’estomac, flatulence et nausées, a montré un effet carminatif52.

L’allicine a montré une activité antiparasitaire contre la plupart des parasites intestinaux humains tels que Entamoeba histolytica, Ascaris lumbricoides et Giardia lamblia53.

Toxicité

Travail TRAMIL54

Le bulbe frais épluché pilé, par voie topique (patch avec 0,6 g/6 cm2 de peau/4 heures), sur lapin albinos New Zealand (3 mâles), modèle d’irritabilité dermique aigüe de Draize. La zone traitée a été lavée et des lectures d’érythème et d’oedème ont été effectuées au moment de retirer le patch et après 1, 24, 48 et 72 heures. Un indice de 0,55 a été observé, ce qui le range dans la catégorie légèrement irritante.

Travail TRAMIL55

L’extrait aqueux (décoction 30%) de bulbe frais non épluché pilé (4,46 mg/mL de solides totaux) par voie orale (2 mL/100 g de poids corporel); au rat, selon le modèle de classes toxiques aigües, n’a pas provoqué la mort ni de signes évidents de toxicité pendant les 14 jours d’observation, et n’a pas mis de changement en évidence lors des études histopathologiques. L’extrait de bulbe, par voie topique en cataplasme à hautes concentrations peut provoquer une nécrose de la peau56 et une activité allergénique57. Ce dernier point a aussi été vérifié par l’administration de l’extrait aqueux par voie orale, à des rats et à des humains sensibles58.

La DL50 du bulbe par voie orale et sous-cutanée à des rats des deux sexes a été supérieure à 30 mL/kg59. L’extrait de bulbe (2 g/kg/5 fois par semaine/6 mois) par voie orale au rat, n’a pas eu d’effets toxiques évidents60. L’extrait aqueux de bulbe, (100 mg/jour/3 mois) par voie orale au rat mâle et femelle, n’a pas provoqué de changement de poids ni mis en évidence d’altérations anatomopathologiques du foie, du coeur, ni des vésicules séminales du mâle. La numération des globules blancs et rouges n’a pas été modifiée61.

Le jus de bulbe ajouté à l’eau de boisson (5%) du régime alimentaire du rat n’a provoqué aucun effet toxique évident62. La dose de 350 mg/personne (des deux sexes de 30 à 62 ans) par voie orale 2 fois par jour, n’a pas provoqué de manifestation toxique63.

Une étude clinique en double aveugle, randomisée avec groupe placébo, avec 30 enfants entre 8-18 ans, recevant pendant 8 semaines un extrait, par voie orale, d’ail commercial (Lichtwer Pharma, RFA) en doses de 300 mg 3 fois par jour, n’a pas montré de différences significatives entre les groupes64.

Le bulbe cru, par voie orale à 20 patients, a augmenté l’activité fibrinolytique de 72% et le bulbe cuit de 63%, 6 heures après l’administration65.

L’extrait aqueux de bulbe a provoqué une activité utérotonique in vitro sur l’utérus de souris gestante66.

L’huile essentielle (1 g/kg) par voie orale au lapin, a montré une activité anticoagulante67.

On ne dispose pas d’information garantissant l’innocuité de son emploi sur les enfants, ni sur les femmes enceintes ou allaitantes.

Préparation et dosage

Le bulbe d’Allium sativum constitue un condiment de consommation humaine relativement étendue. Le bulbe d’ail à des fins médicinales devrait être consommé avec les repas pour éviter d’éventuels problèmes grastro-intestinaux68. Contre fièvre, parasites intestinaux, lourdeurs d’esto¬mac, nausée ou flatulence :

Préparer une décoction avec 1-2,5 gousses (2 à 5 grammes) d’ail frais68 ou 0,4-1,2 grammes d’ail en poudre sèche68 dans 1 tasse (250 millilitres) d’eau, faire bouillir pendant 10 minutes dans un récipient couvert. Laisser refroidir, filtrer et boire 1 tasse 3 fois par jour. Contre les affections cutanées, le prurit, la candidose, le mal de dent ou les douleurs d’oreille :

Peler et laver correctement 1-2,5 gousses (2-5 grammes) d’ail frais, les piler et appliquer sur la zone affectée 2 fois par jour. 36

Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.

Références


  1. WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d’Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.
  2. GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.
  3. GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala.
  4. WENIGER B, 1987-88 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.
  5. JEAN-PIERRE L, 1988 TRAMIL survey. St. Lucia National Herbarium, Castries, St Lucia.
  6. FAUJOUR A, MURREY D, CHELTENHAM-CORBIN B, CARRINGTON S, 2003 TRAMIL survey. enda-caribbean, IICA & UAG, Saint Thomas, Barbados.
  7. BOULOGNE I, 2008 Enquête TRAMIL, Les Saintes, UAG, Guadeloupe (FWI).
  8. NATURAL STANDARD, 2010 Garlic (Allium sativum L.). Foods, Herbs & Supplements. www. naturalstandard.com/monographs/herbssupplements/garlic. Last updated 5/17/2010.
  9. GRUENWALD J, BRENDLER T, JAENICKE C, 2004 Physicians’ Desk Reference for Herbal Medicines, Third Edition. Montvale, NJ, USA: Thomson Healthcare, Inc. 988pp.
  10. BRINKER FND, 2001 Herb contraindications and drug interactions. 3° edition. Sandy, Oregon, USA: Eclectic Medical Publications.
  11. ARTECHI A (Ed.), 1998 Fitoterapia Vademécum de prescripción de Plantas Medicinales. Barcelona, España: Masson. p63.
  12. ALONSO JR, 1998 Tratado de fitomedicina. Bases clínicas et farmacológicas. Buenos Aires, Argentina: Ed. ISIS S.R.L. p208.
  13. QUILEZ AM, GARCIA D, SAENZ T, 2009 Uso racional de medicamentos a base de plantas. Guía de interacciones entre fitomedicamentos et fármacos de síntesis. Sevilla, España: 1a Edición Fundación Farmacéutica Avenzoar.
  14. MEDLINE PLUS, 2009 Ajo (Allium sativum L.). Biblioteca Nacional de Medecina de EE.UU et los Institutos Nacionales de la Salud. URL: www.nlm.nih.gov/ medlineplus/spanish/druginfo/natural/patient-garlic.html
  15. Dosing.
  16. CAPORASO N, SMITH S, ENG R, 1983 Antifungal activity in human urine and serum after ingestion of garlic. Antimicob Agents Chemother 23(5):700-702.
  17. PISCITELLI SC, BURSTEIN AH, WELDEN N, GALLICANO KD, FALLOON J, 2002 The effect of garlic supplements on the pharmacokinetics of saquinavir. Clinical infectious diseases 34(2):234-238.
  18. GALLICANO K, FOSTER B, CHOUDHRI S, 2003 Effect of short-term administration of garlic supplements on single-dose ritonavir pharmacokinetics in healthy volunteers. British J of Clinical Pharmacology 55(2):199-202.
  19. MARKOWITZ JS, DEVANE CL, CHAVIN KD, TAYLOR RM, RUAN Y, DONOVAN JL, 2003 Effects of garlic (Allium sativum L.) supplementation on cytochrome P450 2D6 and 3A4 activity in healthy volunteers. Clin Pharmacol Ther 74(2):170-177.
  20. AL-NAGDY SA, ABDEL-RAHMAN MO, HEIBA HI, 1988 Evidence for some prostaglandins in Allium sativum extracts. Phytother Res 2:4196-4197.
  21. ROLLERI F, 1943 Occurrence of nicotinic acid and nicotinamide in curative plants. Arch Pharm (Weinheim) 281:118.
  22. DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Ratón, USA: CRC Press. p13.
  23. DR. DUKE’S PHYTOCHEMICAL AND ETHNOBOTANICAL DATABASES, 2009 www.ars-grin.gov/duke/
  24. KOCH HP, JAGER W, GROH U, HOVIE JE, PLANK G, SEDLAK U, PRAZNIK W, 1993 Carbohydrates from garlic bulbs (Allium sativum L.) as inhibitors of adenosine deaminase enzyme activity. Phytother Res 7(5):387-389.
  25. BAUMGARTNER S, DAX TG, PRAZNIK W, FALK H, 2000 Characterisation of the high-molecular weight fructan isolated from garlic (Allium sativum L.). Carbohydr Res 328(2):177-183.
  26. RAKHIMBAEV IR, OL’SHANSKAYA RV, 1981 Preliminary identification of natural gibberellins of garlic. Izv Akad Nauk Kaz Ssr Ser Biol 2:17-22.
  27. INAGAKI M, HARADA Y, YAMADA K, ISOBE R, HIGUCHI R, MATSUURA H, ITAKURA Y, 1998 Isolation and structure determination of cerebrosides from garlic, the bulbs of Allium sativum L. Chem Pharm Bull 46(7):1153-1156.
  28. SENDL A, ELBL G, STEINKE B, REDL K, BREU W, WAGNER H, 1992 Comparative pharmacological investigations of Allium ursinum and Allium sativum. Planta Med 58(1):1-7.
  29. 8 MOCHIZUKI E, YAMAMOTO T, KOMIYAMA Y, NAKAZAWA H, 1998 Identification of Allium products using flame photometric detection gas chromatography and distribution patterns of volatile sulfur compounds. J Agr Food Chem 46(12):5170-5176.
  30. 9 UEDA Y, SAKAGUCHI M, HIRAYAMA K, MIYAJIMA R, KIMIZUKA A, 1990 Characteristic flavor constituents in water extract of garlic. Agr Biol Chem 54(1):163-169.
  31. 0 LAWSON LD, WOOD SG, HUGHES BG, 1991 HPLC analysis of allicin and other thiosulfinates in garlic clove homogenates. Planta Med 57(3):263-270. 37
  32. MUTSCH-ECKNER M, ERDELMEIER CAJ, STICHER O, REUTER HD, 1993 A novel amino acid glycoside and three amino acids from Allium sativum. J Nat Prod 56(6):864-869.
  33. PENG JP, CHEN H, QIAO YQ, MA LR, NARUI T, SUZUKI H, OKUYAMA T, KOBAYASHI H, 1996 Two new steroidal saponins from Allium sativum and their inhibitory effects on blood coagulability. Yao Hsueh Hsueh Pao 31(8):607-612.
  34. MATSUURA H, USHIROGUCHI T, ITAKURA Y, FUWA T, 1989 Further studies on steroidal glycosides from bulbs, roots and leaves of Allium sativum L. Chem Pharm Bull 37(10):2741-2743.
  35. VICTORIA MdC, MORON FJ, MARTINEZ I, BRITO G, FUENTES V, 2011 Efecto antipirético de la decocción 30% de bulbo fresco machacado de Allium sativum (ajo) en ratas. Informe TRAMIL. Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, Laboratorio Central de Farmacología, La Habana, Cuba.
  36. SHARMA V, SETHI M, KUMAR A, RAROTRA JR, 1977 Antibacterial property of Allium sativum in vivo & in vitro studies. Indian J Exp Biol 15:466.
  37. SHAMS M, SHOKOOHAMIRI MR, AMIRRAJAB N, MOGHADASI B, GHAJARI A, ZEINI F, SADEGHI G, RAZZAGHI M, 2006 In vitro antifungal activities of Allium cepa, Allium sativum and ketoconazole against some pathogenic yeasts and dermatophytes. Fitoterapia 77:321-323.
  38. MOLINA NM, 1992 Actividad antimicrobiana de extractos de Allium sativum. Evaluación preclínica, farmacológica et toxicológica (Tesis de graduación). Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.
  39. EL-TANBOULY ND, ABDEL-MEGID RM, 1994 HPLC determination of alliin in garlic and garlic products and their antimicrobal activity. Zagazig J Pharm Sci 3(3A):120-124.
  40. CACERES A, GIRON LM, ALVARADO SR, TORRES MF, 1987 Screening of antimicrobial activity of plants popularly used in Guatemala for the treatment of dermatomucosal diseases. J Ethnopharmacol 20(3):223-237.
  41. KABELIK J, 1970 Antimicrobial properties of garlic. Pharmazie 25(4):266-270.
  42. ADETUMBI M, JAVOR GT, LAU BH, 1986 Allium sativum (garlic) inhibits lipid synthesis by Candida albicans. Antimicrob Agents Chemother 30(3):499-501.
  43. APPLETON JA, TANSEY MR, 1975 Inhibition of growth of zoopathogenic fungi by garlic extract. Mycologia 67:882-885.
  44. PLODDEE A, PALAKORNKOL R, 1977 Antifungal activity of garlic. Undergraduate Special Project Report 1977:23.
  45. DELAHA EC, GARAGUSI VF, 1985 Inhibition of mycobacteria by garlic extract (Allium sativum ). Antimicrob Agents Chemother 27(4):485-486.
  46. FERNANDEZ EJ, 1995 Efecto de dos formulaciones hidroalcohólicas de Allium sativum en el tratamiento de patients con dermatofitosis (Tesis de especialidad en farmacología). Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.
  47. PRASAD G, SHARMA VD, RAO VN, KUMAR A, 1983 Efficacy of garlic (Allium sativum) treatment against dermatophytosis in man and animals. Indian Vet Med J 7(3):161-163.
  48. MARTINEZ CROVETTO R, 1981 Plantas utilizadas en medicina en el Noroeste de Corrientes. Miscelanea (Fund Miguel Lillo) 69:7-139.
  49. ABDEL-GHAFFAR F, SEMMLER M, AL-RASHEID KA, STRASSEN B, FISCHER K, AKSU G, KLIMPEL S, MEHLHORN H, 2011 The effects of different plant extracts on intestinal cestodes and on trematodes. Parasitol Res 108(4):979-984.
  50. SOFFAR SA, MOKHTAR GM, 1991 Evaluation of the antiparasitic effect of aqueous garlic (Allium sativum) extract in Hymenolepiasis nana and giardiasis. J Egypt Soc Parasitol 21(2):497-502.
  51. NAHED HA, HODA AT, YOMNA IM, 2009 Effects of garlic on albino mice experimentally infected with Schistosoma mansoni: a parasitological and ultrastructural study. Trop Biomed 26(1):40-50.
  52. GAAFAR MR, 2012 Efficacy of Allium sativum (garlic) against experimental cryptosporidiosis, Alexandria J of Medicine 48:59–66.
  53. DAMRAU F, FERGUSON E, 1949 The modus vivendi of carminative. The therapeutic value of garlic in functional gastrointestinal disorders. Rev Med J 2:757-758.
  54. DEBLASI V, DEBROT S, MENOUD A, GENDRE L, SCHOWING J, 1990 Amoebicidal effect of essential oils in vitro. J Toxicol Clin Exp 10:361- 373.
  55. MARTINEZ MJ, MOREJON Z, LOPEZ M, BOUCOURT E, FUENTES V, MORON F, 2005 Irritabilidad dérmica primaria de bulbo fresco machacado de Allium sativum L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”, Cerro, C. Habana, Cuba.
  56. MARTINEZ MJ, MOREJON Z, LOPEZ M, BOUCOURT E, FUENTES V, MORON F, 2005 Clases tóxicas agudas (CTA) de una decocción de bulbo de Allium sativum L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.
  57. GARNIER G, BEZANGER-BEAUQUESNE L, 1961 Ressources médicinales de la flore française. Paris, France: Ed. Vigot Frères.
  58. BOJS G, SVENSSON A, 1988 Contact allergy to garlic used for wound healing. Contact Derm 18(3):179-181.
  59. PAPAGEORGION C, CORBET JP, BRANDAO FM, PECEGUEIRO M, BENEZIA C, 1983. Allergic contact dermatitis to Garlic (Allium sativum L.). Identification of the allergens: the role of mono-di and trisulfides present in garlic. A comparative study in man and animal (guinea pig). Arch Dermatol Res 275(4):229-234.
  60. KANEZAWA A, NAKAGAWA S, SUMIYOSHI H, MASAMOTO K, HARADA H, NAKAGAMI S, DATE S, YOKOTA A, NISHIKAWA M, FUWA T, 1984 General toxicity tests of garlic extract preparation contained vitamins (Kyoleopin). Pharmacometrics 27(5):909-929.
  61. SUMIYOSHI H, KANEZAWA A, MASAMOTO K, HARADA H, NAKAGAMI S, YOKOTA A, NISHIKAWA M, NAKAGAWA S, 1984 Chronic toxicity test of garlic extract in rats. J Toxicol Sci 9(1):61-75.
  62. AL-BEKAIRI AM, SHAH AH, QURESHI S, 1990 Effect of Allium sativum on epididymal spermatozoa, estradiol-treated mice and general toxicity. J Ethnopharmacol 29(2):117-125.
  63. HUH K, PARK JM, LEE S-IL, 1985 Effect of garlic on the therapeutic glutathione S-transferase and glutathione peroxidase activity in rat. Arch Pharm Res 8(4):197-203.
  64. SITPRIJA S, PLENGVIDHYA C, KANGKAYA V, BHUVAPANICH S, TUNKAYOON M, 1987 Garlic and diabetes mellitus phase III clinical trial. J Med Assoc 70(2):223-227.
  65. MC CRINDLE BW, HELDEN E, CONNER WT, 1998 Garlic extract therapy in children with hypercholesterolemia. Arch Pediatr Adolesc Med 152(11):1089-1094.
  66. CHUTANI SK, BORDIA A, 1981 The effect of fried versus raw garlic on fibrinolytic activity in man. Therosclerosis 38:417-421.
  67. SHARAF A, 1969 Food plant as a possible factor in fertility contrôle. Qual Plant MaterVeg 17:153.
  68. CHAUHAN LS, GARG J, BEDI HK, GUPTA RC, BOMB BS, AGARWAL MP, 1982 Effect of onion, garlic and clofibrate on coagulation and fibrinolytic activity of blood in cholesterol fed rabbits. Indian Med J 76(10):126- 127.
  69. WHO, 2004 Allium sativum. WHO Monographs on selected medicinal plants. Volume 1. Bulbis Alii Sativi. Ginebra, Suiza, Oct.28,2004. URL: www. who.int/medicines/library/trm/medicinalplants/monograph_volume_ one.shtml
Récupérée de « https://uses.plantnet-project.org/f/index.php?title=Allium_sativum_(TRAMIL)&oldid=301218 »