Anethum graveolens (TRAMIL) : Différence entre versions

Version du 21 octobre 2020 à 20:09

• Nom accepté : Anethum graveolens
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Noms vernaculaires significatifs TRAMIL

• Martinique : lanni, anis
• Rép. Dominicaine : hinojo (en Rép. Dom., le nom vernaculaire « hinojo » désigne indistinctement Anethum graveolens et Foeniculum vulgare)
• autres noms créoles : anèt, folanni, fénouy bata

Distribution géographique

Originaire du bassin méditerranéen, amplement cultivée en Amérique.

Description botanique

Plante herbacée, à tige dressée, pouvant atteindre 1,7 m de haut. Feuilles oblongues à ovées, tripennées de 20- 40 sur 10-20 cm, les derniers segments sont filiformes. Ombelles de 15 cm de diamètre, nombreuses fleurs, pétales jaunes. Fruit ovalo-elliptique de 4 mm sur 2 mm. Cette espèce est fréquemment confondue avec Foeniculum vulgare, laquelle a une gousse pétiolaire plus large et toutes les côtes de fruit égales.

Vouchers :

• Arvigo,1064,JBSD
• Fuentes,4644,ROIG
• Longuefosse&Nossin,108,HAVPM

Emplois traditionnels significatifs TRAMIL

• douleurs abdominales et flatulence : graine, décoction, voie orale^1-2

• douleurs d’estomac : graine et feuille, décoction, voie orale¹

Pour ces deux emplois, en association principalement avec Eupatorium aromatisans, Lippia micromera ou du sel.

Recommandations

Selon l’information disponible :

L’emploi contre les douleurs abdominales, la flatulence et les douleurs d’estomac est classé REC basé sur l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité et l’information scientifique publiée.

Si l’état du patient se détériore ou si les douleurs d’estomac ou abdominales durent plus de 3 jours, consulter un médecin.

Ne pas employer avec des femmes ayant l’intention de procréer, enceintes ou allaitantes, ni avec des enfants de moins de 12 ans.

Chimie

Les parties aériennes et la graine contiennent des flavonoïdes : camphérol, quercétine, rhamnétine, lutéoline³, rutine⁴; coumarines : esculétine, bergaptène⁵; scopolétine; glucosides coumariniques⁶.

Analyse proximale pour 100 g de graine⁷: calories : 305; eau : 7,7%; protéines : 16%; lipides : 14,5%; glucides : 55,2%; fibres : 21,1%; cendres : 6,6%; calcium : 1516 mg; phosphore : 277 mg; fer : 16,3 mg; sodium : 20 mg; potassium : 1186 mg; carotène : 32 μg; thiamine : 0,42 mg; riboflavine : 0,28 mg; niacine : 2,81 mg.

Activités biologiques

Les extraits aqueux (6,46%) et éthanolique de graine par voie orale et intrapéritonéale à la souris albinos mâle (25-30 g) a démontré un effet protecteur et antisécrétion significatif sur la muqueuse gastrique⁸.

L’extrait éthanolique (95%) de feuille et de tige (4 mg/mL) a montré une activité antibactérienne contre Escherichia coli et Shigella dysenteriae sur plaque d’agar-agar⁹.

Sur le modèle de duodénum isolé de lapin (50 μg/mL), on a mis en évidence une activité antispasmodique¹⁰.

L’huile essentielle (2%) a montré un effet antimoussant in vitro, auquel est attribuée l’activité carminative¹¹. Dans les différentes parties de cette plante, on a identifié des composés chimiques auxquels sont attribués une activité antispasmodique¹².

La Commission E allemande a approuvé l’usage du fruit ou de la graine séchée contre les dyspepsies^13-14.

Toxicité

Travail TRAMIL¹⁵

L’extrait aqueux (décoction 30%) de graine sèche, (2 et 5 g/kg) administré en dose unique voie orale à la souris Swiss OF-1 (5 mâles et 5 femelles dans chaque groupe), selon le modèle de DL50, le groupe témoin recevant de l’eau d’une part. D’autre part le même extrait par la même voie (2 g/kg), en dose unique au rat Sprague Dawley (3 mâles et 3 femelles), modèle de toxicité aiguë, n’ont provoqué aucune mortalité, ni signes de réactions adverses pendant les 14 jours d’observation, pas plus que de conséquences histopathologiques.

L’extrait aqueux de parties aériennes (50 mg poids sec de matériel végétal/disque) a montré une activité antimutagénique in vitro sur le modèle de Salmonella typhimurium TA98 avec activation métabolique¹⁶. L’extrait aqueux de graine (6,46%) par voie intrapéritonéale à la souris albinos mâle (25-30 g) a montré une DL50 = 3,04 g/kg; la dose non léthale maximale tolérée a été de 0,45 g/kg⁸.

L’extrait aqueux de graine sèche (175 mg/kg) par voie orale à la rate en gestation, n’a pas induit d’effet tératogène ni embryotoxique¹⁷.

L’extrait aqueux de feuille (175 mg/kg) par voie orale à la rate en gestation, a induit un effet tératogène et embryotoxique¹⁸.

L’administration des parties aériennes pendant 450 jours (33% de la diète quotidienne) sans interruption au rat ACI des deux sexes, n’a pas induit de carcinogenèse¹⁹. À doses élevées, l’huile essentielle entraîne une photodermatite et provoque des convulsions¹⁴. On ne dispose pas d’information pouvant garantir l’innocuité de l’usage de ce remède administré aux enfants, aux femmes enceintes ou allaitantes.

Préparation et dosage

Les parties aériennes d’Anethum graveolens constituent un condiment dont la consommation humaine est relativement étendue.

Contre les douleurs d’estomac, les douleurs abdominales ou les flatulences :

Préparer une décoction avec 2-3 cuillères à soupe (15-30 grammes) de graines dans 4 tasses (1 litre) d’eau; faire bouillir 10 minutes dans un récipient couvert. Laisser refroidir, filtrer et boire 1 tasse après les repas²⁰.

Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.

Références

1. GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.
2. LONGUEFOSSE JL, NOSSIN E, 1990-95 Enquête TRAMIL. Association pour la valorisation des plantes médicinales de la Caraïbe AVPMC, Fort de France, Martinique.
3. DANIEL M, 1989 Polyphenols of some Indian vegetables. Curr Sci 58(23):1332-1334.
4. VARNAITE R, 1988 Rutin content in capsicum, capsella, urtica, primula, lepidium, lactuca, brassica, anethum, beta, petroselinum, Allium genera representatives. Liet Tsr Mokslu Akad Darb Ser C 4:29-32.
5. DRANIK LI, PROKOPENKO AP, 1969 Coumarins and acids from Anethum graveolens fruit. Khim Prir Soedin 55:437.
6. APLIN RT, PAGE CB, 1967 Constituents of native Umbelliferae. I. Coumarins from dill (Anethum graveolens). J Chem Soc C 23:2593-2596.
7. DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Raton, USA: CRC Press. p17.
8. HOSSEINZADEH H, KARIMI GR, AMERI M, 2002 Effects of Anethum graveolens L. seed extracts on experimental gastric irritation models in mice. BMC Pharmacol 2: 21.
9. IKRAM M, HAQ I, 1980 Screening of medicinal plants for antimicrobial activity. Fitoterapia 51:281-284.
10. SHIPOCHLIEV T, 1968 Pharmacological investigations into several essential oils, first communication. Effect on the smooth musculature. Vet Med Nauki 5(6):63-69.
11. HARRIES N, JAMES KC, PUGH WK, 1978 Antifoaming and carminative actions of volatile oils. J Clin Pharmacol 2:171-177.
12. DUKE JA, 1992 Handbook of biologicaly active phytochemicals and their activities. Boca Raton, USA: CRC Press.
13. PDR FOR HERBAL MEDICINES, 2000 Anethum graveolens. Physician Desk Reference (PDR) for Herbal Medicines, Montvale, USA: Medical Economics Company. p 252.
14. CANIGUERAL S, VILA R, RISCO E, PEREZ F, PORTILLO A, FREIXA B, MILO B, VANACLOCHA B, RIOS JL, MORALES MA, ALONSO JR, BACHILLER LI, PERIS JB, STUBING G, 2002 Anethum graveolens. Vademecum de Fitoterapia, Editorial Masson, Barcelona, España, Jul.20,2002. URL: http://www.masson.es/book/fitoterapia.html
15. MARTINEZ MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BARCELO H, LAINEZ A, MONTES ME, REGO R, BOUCOURT E, MORON F, 2000 Toxicidad aguda clásica y clases tóxicas agudas de semilla seca de Anethum graveolens. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.
16. NATAQUE K, KANZAWA K, MIZUNO M, UENO N, KOBAYASHI T, DANNE GI, MINAMOTO S, 1989 Herb water-extracts markedly suppress the mutagenicity of TRP-P-2. Agr Biol Chem 53(5):1423-1425.
17. NATH D, SETHI N, SINGH RK, JAIN AK, 1992 Commonly used Indian abortifacient plants with special reference to their teratologic effects in rats. J Ethnopharmacol 36(2):147-154.
18. SETHI N, NATH D, SINGH RK, 1989 Teratological evaluation of some commonly used indigenous antifertility plants in rats. Int J Crude Drugs Res 27(2):118-120.
19. FUKUOKA M, YOSHIHIRA K, NATORI S, SAKAMOTO K, IWAHARA S, HOSAKA S, IRONO I, 1980 Characterization of mutagenic principle and carcinogenicity test of dill weed and seeds. J Pharmacobio Dyn 3(5):236-244.
20. ALBORNOZ A, 1993 Medicina tradicional herbaria. Guía de Fitoterapia. Caracas, Venezuela: Editorial Instituto Farmacoterápico Latino S.A. pp87,122.