Gossypium herbaceum (PROTA)

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Gossypium herbaceum L.




Protologue: Sp. pl. 2: 693 (1753).
Famille: Malvaceae
Nombre de chromosomes: 2n = 26

Synonymes

Noms vernaculaires

Coton, cotonnier, cotonnier herbacé, cotonnier d’Asie, cotonnier africain (Fr). Cotton, Arabian cotton, Levant cotton (En). Algodoeiro, algodoeiro asiático (Po).

Origine et répartition géographique

Gossypium herbaceum est originaire d’Afrique australe mais a été domestiqué pour la première fois en Arabie, d’où des formes cultivées se sont répandues vers l’ouest en Afrique et vers l’est en Inde. Actuellement, il est cultivé en Afrique et en Asie, et parfois planté dans le Nouveau Monde.

Dans cet article le mot “coton” ou “cotonnier” désigne les données relatives à l’ensemble des 4 espèces de Gossypium cultivées (Gossypium arboreum L., Gossypium barbadense L., Gossypium herbaceum et Gossypium hirsutum L.) ; lorsque ces données ne concernent que Gossypium herbaceum, cela est explicitement mentionné.

Usages

Le cotonnier est le plus important groupe de plantes à fibres au monde. Les principales fibres de coton sont les plus longs poils des graines (“lints”), utilisés pour faire du fil à tisser pour les tissus, seuls ou associés à d’autres fibres végétales, animales ou synthétiques. Les lints de coton servent également à fabriquer d’autres produits dont du fil à coudre, des cordages et des filets de pêche. Les chutes et chiffons de textiles en coton servent dans l’industrie du papier pour la production de papier à écrire, d’édition et de dessin de la plus haute qualité. Avec les fibres courtes (“fuzz”, “linters” ou “duvet”) on fabrique de nombreux produits, dont des papiers, de la ficelle, du rembourrage pour les automobiles, des explosifs, des plastiques et de la pellicule photo. On transforme la pâte de linters en différents types de papier, selon leur classe. Les linters ont également été utilisés pour la production d’acétate de cellulose et de viscose. Les tiges du cotonnier sont transformées en papier et en carton, par exemple en Chine, et en panneaux de particules agglomérées au ciment.

L’huile des graines de cotonnier est utilisée à l’échelle industrielle dans de nombreux produits, dont la margarine, la mayonnaise, les huiles pour salade et de cuisson, les vinaigrettes et les graisses émulsifiables. Elle sert également à fabriquer du savon, des produits cosmétiques, des lubrifiants, des huiles sulfonées et des enrobages de protection. Par endroits elle sert en cuisine et pour la friture. Des mélanges de biogazole d’huile de coton et de gazole peuvent être utilisés dans les moteurs diesel traditionnels sans aucune modification majeure. Le tourteau de graines, qui est le résidu de l’extraction d’huile, est un concentré important de protéines pour le bétail. Les tourteaux de basse qualité sont utilisés comme fumure. La graine entière peut être donnée à des ruminants, qui sont moins sensibles au gossypol toxique de la graine que les non-ruminants, ou s’applique comme fumure. Les coques apportent des fibres de basse qualité dans les aliments du bétail, ou servent de litière ou de combustible. Les capsules, les feuilles et les petits rameaux restants sont pâturés par les ruminants. Les tiges sèches servent de combustible ménager.

En Afrique tropicale, Gossypium herbaceum a majoritairement été remplacé par Gossypium hirsutum et Gossypium barbadense comme source de fibres de coton, et sa fibre n’est pas très utilisée de nos jours. En Namibie, les fibres des plantes sauvages sont utilisées comme chiffons de nettoyage, elles sont placées dans le carquois pour séparer les flèches, et sont utilisées pour positionner des médicaments dans les oreilles. Au Zimbabwe, la filature et le tissage de fibre de Gossypium herbaceum sauvage ont été pratiqués jusqu’en 1940, mais la pratique semble être éteinte. Dans la région du Lac Tchad au Nigeria, Gossypium herbaceum est planté pour borner les champs.

Gossypium herbaceum est couramment utilisé en médecine traditionnelle africaine, en particulier des préparations à base de racines. Au Sénégal, la macération de racines est donnée aux nouveaux-nés et aux enfants malades ou rachitiques pour les fortifier. En Somalie, la décoction de racines est absorbée comme boisson pour ses vertus abortives. En Ethiopie, la racine est mastiquée en cas de morsure de serpent. En Namibie, l’écorce de racine en poudre s’applique comme hémostatique. Au Botswana, des préparations de racines sont utilisées pour traiter les palpitations cardiaques. Au Mozambique, des décoctions de racines se boivent comme tonique et pour lutter contre les vomissements, l’infusion de racines contre le manque d’appétit, l’infusion de racines de Gossypium herbaceum et Maclura africana (Bureau) Corner pour purifier le lait maternel, et l’infusion de racines de Gossypium herbaceum et d’une espèce de Cynodon pour éviter l’avortement. Le jus de la tige s’applique contre l’otite aux Seychelles. Le jus du fruit immature chauffé est appliqué en gouttes dans l’oreille contre le mal d’oreille en Somalie, alors qu’en Ethiopie le fruit réduit en poudre s’applique sur la tête pour traiter les infections fongiques.

Production et commerce international

Selon les estimations de la FAO, la production annuelle mondiale de coton en 2004–2008 était d’environ 70 millions t de coton-graine (coton non égrené, contenant des graines, des lints et des fuzz), sur 34 millions ha. Cependant, la majeure partie (plus de 90%) de la production mondiale de coton est issue de Gossypium hirsutum, qui est très productif et qui en termes de rendement répond bien à des conditions de croissance améliorées, à l’engrais, à la protection phytosanitaire et à l’irrigation supplémentaire. Le reste se compose surtout de Gossypium barbadense. Gossypium herbaceum représente moins de 1% de la production mondiale en fibres de coton. En 2005, la surface totale plantée en Gossypium herbaceum était d’environ 770 000 ha, dont 98% en Inde. En Afrique tropicale, Gossypium herbaceum n’est cultivé que pour l’usage domestique.

Propriétés

Les fibres de coton sont des extensions unicellulaires des cellules épidermiques de la graine. On distingue deux types de fibres : des fibres longues (“lints”) et des fibres courtes (“fuzz” ou “linters”). Les lints de coton font 10–40(–64) mm de long, avec un diamètre de (12–)18–28(–42) μm et ont un rapport longueur/largeur de 1000–4000. Les fibres de lints de Gossypium herbaceum font (10–)20–25 mm de long et sont généralement grossières, bien que des fibres très fines se rencontrent également qui sont transformées en textiles traditionnels décoratifs faits à la main (“woven winds” de l’Inde). En général, les fibres de Gossypium herbaceum sont plus courtes, plus grossières et moins résistantes que celles de Gossypium hirsutum et Gossypium barbadense. Les fuzz sont comparables en apparence aux lints, mais sont plus courts (2–7 mm de long), plus cylindriques et ont des parois plus épaisses.

Au-delà de la longueur des fibres et de leur uniformité, les propriétés les plus importantes du coton sont la finesse (diamètre), la maturité, la résistance et l’élasticité. La finesse associée à la maturité (le degré auquel la paroi cellulaire secondaire s’est développée) des fibres de coton est généralement déterminée par la résistance au passage de l’air, et exprimée selon une valeur appelée “micronaire”, traduisant la densité linéaire des fibres. Les valeurs typiques de la résistance à la traction, de l’allongement à la rupture, et du module de Young des fibres de coton sont de 285–595 N/mm², de 7,0–8,0% et de 5500–12 600 N/mm² respectivement. Parmi les principales fibres textiles du monde, le coton présente une combinaison unique de propriétés, en ce qu’il est résistant, confortable, lavable, durable et imprimable. Il se mélange également bien avec d’autres fibres qui lui confèrent une plus grande résistance, de la brillance et une résistance au froissement. Sur la base du poids sec, les fibres de coton contiennent 88–96% d’α-cellulose, 3–6% d’hémicelluloses et 1–2% de lignine.

Les graines de coton qui restent après l’égrenage sont constituées de linters ( 5–10%), d’huile (15–33%), de tourteau (33–45%) et de coques (24–34%). L’huile de graines de coton est une huile semi-siccative obtenue par une extraction mécanique ou par solvants à partir des graines. Les principaux acides gras dans l’huile de graines de coton sont l’acide linoléique (42–59%), l’acide palmitique (20–34%) et l’acide oléique (13–25%). L’huile des graines contient également 0,5–1(–2)% d’acides gras cyclopropénoïdes, dont on sait qu’ils provoquent des troubles physiologiques chez les animaux. L’huile ainsi que d’autres parties de la plante des Gossypium contiennent du gossypol, un aldéhyde triterpénoïde, qui est toxique pour l’homme et les animaux, les animaux monogastriques en particulier. Le gossypol présente des propriétés insecticides, antimicrobiennes, contraceptives et antitumorales. Le gossypol et ses composés apparentés sont supposés conférer aux cotonniers leur tolérance ou leur résistance aux insectes et leurs propriétés antimicrobiennes. Il existe des cultivars sans glandes, exempts de gossypol, mais ils sont plus sensibles aux ravageurs. Le gossypol peut être retiré de l’huile par une extraction aux solvants, après une extraction de l’huile des graines, que ce soit par un procédé mécanique ou aux solvants. Le tourteau et la farine contiennent plus de 40% de protéines brutes, mais ne sont pas sans danger pour les animaux monogastriques, à cause du gossypol qu’ils contiennent. Le gossypol dans le tourteau peut être éliminé ou rendu inoffensif par des moyens chimiques (sels ferreux) ou physiques (chauffage), mais il est plus difficile d’atteindre cet objectif d’un point de vue économique que de retirer le gossypol de l’huile.

Des extraits au méthanol de feuilles de Gossypium herbaceum ont montré une activité antibactérienne contre Bacillus megaterium, Escherichia coli, Klebsiella sp., Proteus vulgaris, Pseudomonas fluorescens et Sorcina lutea, alors que les extraits à l’éther de pétrole, au benzène, au chloroforme et à l’acétone étaient inactifs contre la majorité des bactéries.

Description

Arbuste ou sous-arbrisseau pérenne ou annuel atteignant 3 m de haut, avec peu de branches et presque toutes les parties ponctuées de façon irrégulière de glandes noires ; tige épaisse et rigide, tige et branches poilues ou glabres. Feuilles disposées en spirale ; stipules petites, linéaires, caduques ; pétiole de 2–3,5 cm de long ; limbe à 3–7 lobes profonds de moins de la moitié, de 2–6 cm × 2–7 cm, base cordée, lobes ovales à arrondis, seulement légèrement rétrécis à la base, face supérieure glabrescente, face inférieure à poils étoilés, glandes présentes sur la nervure médiane au-dessous. Fleurs solitaires, généralement sur des branches sympodiales ; pédicelle de 7–30 mm de long, non articulé, sans glandes ; segments de l’épicalice (bractéoles) 3, s’écartant nettement de la fleur et du fruit, arrondis à largement triangulaires, habituellement plus larges que longs, cordés à la base, bord à 5–13 dents triangulaires, persistants ; calice de 5–10 mm de long ; corolle jaune ou blanche avec un centre foncé, pétales 5, de 2,5–5 cm de long ; étamines nombreuses, formant une colonne couverte d’anthères, filets courts, anthères 1-loculaires ; pistil à ovaire 3–5-loculaire et un style court, stigmate entier, rarement fendu au sommet. Fruit : capsule arrondie de 2–3,5 cm de long, pourvue d’un bec, surface lisse ou très superficiellement dentée, avec peu de glandes, à 3–4 valves, s’ouvrant un peu lorsque mûre, contenant jusqu’à 11 graines par valve. Graines ovoïdes, densément couvertes de longs poils laineux, blanc pur (lints) et parfois aussi avec un tomentum court et fin (fuzz), fortement attaché aux graines. Plantule à germination épigée.

Autres données botaniques

Le genre Gossypium comprend environ 50 espèces réparties dans les zones tempérées chaudes à tropicales. L’origine du genre est inconnue, mais 3 centres primaires de diversité existent : en Australie, au nord-est de l’Afrique jusqu’à l’Arabie, et du centre-ouest au sud du Mexique. Les 4 cotons cultivés dans le monde (les diploïdes de l’Ancien Monde Gossypium arboreum et Gossypium herbaceum et les tétraploïdes du Nouveau Monde Gossypium barbadense et Gossypium hirsutum) ont été domestiqués indépendamment dans différentes parties du monde. La taxinomie de Gossypium est compliquée, en partie à cause de la domestication de 4 espèces distinctes et de larges hybridations interspécifiques. La littérature est confuse et les auteurs ne sont pas d’accord sur l’identité des nombreuses espèces, sous-espèces, sections, variétés, formes, races et cultivars qui ont été distingués. Actuellement, le système taxinomique de P.A. Fryxell, avec environ 50 espèces regroupées en 4 sous-genres et 8 sections, est le plus généralement accepté. Il est principalement basé sur des données morphologiques et géographiques, mais est confirmé par des preuves cytogénétiques et moléculaires. La recherche cytologique a conduit à la reconnaissance de 8 “groupes génomiques” diploïdes de base, désignés par les lettres A à G, plus K. En général, les espèces au sein d’un groupe génomique peuvent former des hybrides interspécifiques fertiles. Gossypium herbaceum et Gossypium arboreum sont inclus dans le sous-genre Gossypium, qui groupe les espèces diploïdes de l’Ancien Monde à génome A, alors que Gossypium barbadense et Gossypium hirsutum appartiennent au sous-genre Karpas, qui groupe les espèces tétraploïdes du Nouveau Monde à génome AD.

Gossypium herbaceum est sous-divisé en 2 sous-espèces :

– subsp. africanum (Watt) Vollesen (synonyme : Gossypium herbaceum L. var. africanum (Watt) Hutch. & R.L.M.Ghose), la forme sauvage : arbuste pérenne, tige et pétiole sans longs poils simples, parfois à poils étoilés avec de longues branches, stipules de 3–8 (–9) mm de long, calice cilié, et fruit de 15–20(–25) mm de long ; il est présent en Angola, en Namibie, au Botswana, au Zimbabwe, au Mozambique, en Afrique du Sud et au Swaziland, et est considéré comme l’ancêtre des formes cultivées de Gossypium herbaceum.

– subsp. herbaceum, comprenant les formes cultivées : arbuste pérenne ou annuel, tige et pétiole à longs poils simples, stipules de (6–)9–15 mm de long, calice seulement rarement cilié, et fruit de 20–32 mm de long.

Subsp. herbaceum est sous-divisé en 4 races :

– acerifolium : grands arbustes, arrondis, très ramifiés à petites capsules, dans lesquelles les graines sont légèrement couvertes de lints grossiers ; la forme cultivée la plus primitive de Gossypium herbaceum ; probablement domestiqué en Ethiopie ou au sud de l’Arabie d’où il s’est répandu en Afrique de l’Ouest ; en Afrique tropicale, il était autrefois le principal cotonnier cultivé de la Gambie à l’Ethiopie, mais a été remplacé par Gossypium hirsutum et Gossypium barbadense et persiste seulement dans des cultures reliques.

– kuljianum : sous-arbrisseau annuel, très petit, mince, peu ramifié, à petites capsules et lints peu abondants de faible qualité ; à maturité précoce, sélectionné pour les régions à étés courts et chauds et hivers longs et froids ; principalement cultivé en Russie et en Chine occidentale.

– persicum : sous-arbrisseau annuel, petit, trapu, peu ramifié, à grandes capsules arrondies et lints abondants de qualité moyenne ; adapté aux régions avec une saison hivernale relativement fraîche ; initialement répandu autour de la Méditerranée, il a été le premier cotonnier cultivé dans le delta du Nil, il s’est ensuite également répandu vers l’est jusqu’au Turkménistan et à l’Afghanistan en passant par l’Irak.

– wightianum : arbuste annuel, grand, trapu, moyennement ramifié, à grandes capsules et lints abondants de haute qualité ; cultivé en Iran et en Inde occidentale.

Anatomie

Les lints de coton ont un aspect lisse, en forme de ruban et vrillé, les parois des fibres montrant des striures longitudinales et en spirale. Les parois des fibres contiennent de nombreuses couches de chaînes de cellulose, qui s’organisent en spirale et donnent aux fibres sèches leur apparence vrillée caractéristique. Les poils sont couverts d’une cuticule cireuse, donnant à la fibre non transformée un toucher gras et la rendant hydrofuge.

Croissance et développement

Les Gossypium spp. sont normalement des plantes pérennes à port indéterminé, mais ils sont généralement cultivés comme annuels, la formation de nœuds sur la tige principale étant arrêtée par la fructification, la température, l’humidité du sol, la photopériode, ou une combinaison de ces facteurs. C’est une culture qui s’étale sur 120–220 jours. Les plantules lèvent 5–15(–30) jours après le semis et la première vraie feuille se déplie 7–9 jours après, mais ces processus varient selon les températures. Après la germination, les semis forment une longue racine pivotante, qui peut atteindre une profondeur de plus de 25 cm au moment où les cotylédons se déplient, et de 3 m à la mi-saison. L’architecture est dimorphe, l’axe principal et les branches inférieures (naissant de bourgeons axillaires) étant monopodiaux et végétatifs, alors que les branches fructifères (naissant de bourgeons extra-axillaires) sont sympodiales. Les branches fructifères se forment comme des branches primaires en haut de la tige principale et comme des branches secondaires sur les branches végétatives. Généralement seule une branche fructifère se forme à chaque nœud, avec 3–5 fruits par branche. La première branche fructifère apparaît au nœud 4–5 de la tige principale, entre 1 et 2 mois après le semis, et les premiers boutons floraux deviennent visibles sous forme de petites structures pyramidales vertes, connues comme “squares”. Ils ont besoin de 20–35 jours pour se développer en fleurs ouvertes. Les fleurs de cotonnier s’ouvrent généralement vers le crépuscule et la pollinisation se fait habituellement en quelques heures. L’autogamie est le système de reproduction prédominant, mais les insectes peuvent induire une allogamie considérable (atteignant 40%). La floraison est à son apogée 3(–6) semaines après son début et peut continuer pendant environ 6 semaines. Les fruits poussent très rapidement après la fécondation, atteignant leur taille finale au bout de 20–25 jours. Après encore (20–)25–45(–60) jours, selon le génotype et les conditions du milieu, ils sont mûrs. Habituellement, les fruits secs s’ouvrent à leurs sutures et la masse blanche de fibres pelucheuses apparaît. Les graines restent attachées au placenta et sont seulement séparées par la cueillette ou par une pluie ou des vents très violents.

Pendant les 2–4 premières semaines après la floraison (la phase d’allongement), les fibres poussent rapidement, atteignant leur pleine longueur, et pendant les 4–6 semaines suivantes (la phase d’épaississement secondaire) les parois cellulaires des fibres épaississent grâce au dépôt de cellulose en couches consécutives. L’épaisseur de la paroi des cellules d’une fibre, ou le degré auquel la fibre a été garnie de cellulose, dépend principalement de la vigueur de la plante pendant la maturation. A l’ouverture de la capsule, les fibres sèchent et le lumen s’effondre, entraînant l’apparence vrillée en ruban caractéristique de la fibre qui la rend filable.

La chute de boutons floraux et de jeunes capsules est fréquente chez le cotonnier. Elle est aggravée par de mauvaises conditions telles qu’un ciel couvert prolongé, des températures extrêmes, un stress hydrique, l’asphyxie racinaire, des carences en nutriments, des maladies et des dégâts causés par les insectes. Généralement 60% des boutons floraux et des jeunes capsules tombent, mais les fleurs tombent rarement. La capacité à surmonter des événements néfastes par une croissance compensatoire est caractéristique du cotonnier. Cependant, le taux de récupération est seulement partiel, et insignifiant lorsque des dégâts sérieux causés par des insectes surviennent tard dans la saison.

Ecologie

Gossypium herbaceum exige une température de (18–)26–36(–38)°C et une pluviométrie de (200–)750–1250(–1500) mm pendant la saison de croissance. Il peut être cultivé sur des sols moyens à profonds, légers à lourds et bien drainés avec une fertilité modérée et un pH de (5,3–)6–7,2(–8,5). Il est généralement cultivé dans des milieux marginaux sujets à la sécheresse en Asie, du fait de sa capacité de résister à la sécheresse. En Afrique tropicale, on le trouve depuis le niveau de la mer jusqu’à 1200 m d’altitude.

Multiplication et plantation

Le cotonnier se multiplie par graines. Le poids de 1000 graines de Gossypium herbaceum est de 30–60 g. En Inde, Gossypium herbaceum est planté en lignes espacées de 60–260 cm.

Il est possible de multiplier le cotonnier de manière végétative par bouturage ou greffage de tiges ou d’écussons. La mise au point de systèmes de multiplication in vitro, reproductibles, rapides et indépendants du génotype a été difficile pour les espèces de Gossypium, bien que des méthodes soient désormais disponibles pour produire de grandes quantités d’embryons somatiques à partir de cal d’explant d’hypocotyle ou de cotylédon de Gossypium arboreum, Gossypium barbadense, Gossypium herbaceum et Gossypium hirsutum.

Gestion

Le cotonnier peut être cultivé comme plante pérenne et être rabattu pour obtenir une seconde récolte. Autrefois, il était très commun de cultiver les espèces de cotonnier comme des pérennes, mais cette pratique a été déconseillée, car le cotonnier pérenne peut servir de plante-hôte pour les ravageurs et maladies du cotonnier. Par endroits, par exemple au Cameroun, on peut encore rencontrer des champs de cotonnier pérenne.

Maladies et ravageurs

Les maladies sont moins importantes chez le cotonnier que les ravageurs. Les maladies les plus répandues sont le feu bactérien, la maladie des taches foliaires, la bactériose du cotonnier ou la pourriture de la capsule provoquée par Xanthomonas axonopodis pv. malvacearum (synonyme : Xanthomonas campestris pv. malvacearum), l’anthracnose provoquée par Glomerella gossypii (anamorphe : Colletotrichum gossypii), la fusariose provoquée par Fusarium oxysporum, et la verticilliose provoquée par Verticillium dahliae. Avant la découverte d’une résistance qui a été incorporée dans des cultivars de Gossypium hirsutum, le feu bactérien causait des pertes de rendement en coton-graine atteignant 28% dans les cultures de cotonnier en Afrique, et cette maladie est considérée en partie responsable du fait que l’on ait continué à cultiver Gossypium arboreum et Gossypium herbaceum en Afrique et en Asie. On lutte contre le feu bactérien en cultivant le cotonnier au plus tous les 3 ans dans le même champ, en retirant les résidus de récolte et en traitant les semences. On peut lutter contre l’anthracnose grâce aux mêmes mesures, mais aucun cultivar résistant n’est disponible. Les méthodes de culture pour lutter contre les maladies à flétrissement comprennent la rotation des cultures, un apport suffisant en K et la lutte contre les nématodes. Les maladies virales les plus importantes du cotonnier en Afrique tropicale sont l’enroulement des feuilles, la mosaïque et la maladie bleue. On lutte contre ces maladies virales en éliminant les plantes-hôtes qui servent de réservoir et les vecteurs, et en utilisant des cultivars tolérants ou résistants.

Le cotonnier souffre de nombreux ravageurs. Les vers de la capsule comptent parmi les ravageurs les plus inquiétants. Ils s’alimentent à l’intérieur des capsules, endommageant les lints et les graines et provoquant ainsi une considérable réduction du rendement et de la qualité. Les principaux vers de la capsule sont le ver américain (Helicoverpa armigera), le ver rose du cotonnier (Pectinophora gossypiella) et la chenille épineuse (Earias spp.). La chenille épineuse a un effet précoce important de forage des extrémités sur la tige principale conduisant à la formation excessive de branches végétatives et au retardement de la nouaison des capsules, ce qui les rend vulnérables aux vers américains à mi-saison et aux punaises. La résistance aux vers de la capsule n’a pas été atteinte dans la mesure souhaitée, et la lutte contre ces ravageurs a longtemps reposé sur les insecticides.

Les punaises suceuses de feuilles, tiges et bourgeons peuvent provoquer des dégâts considérables. Les cicadelles (Amrasca, Empoasca, Erythroneura, Jacobiella et Jacobisca spp.) sont les premiers ravageurs à apparaître, mais la couverture dense de poils longs sur les feuilles et les tiges fournissent une bonne protection. L’aleurode (Bemisia tabaci) et le puceron du cotonnier (Aphis gossypii) sont des ravageurs arrivant plus tard dans la saison ; le premier est le vecteur du virus de l’enroulement des feuilles et de la mosaïque, le deuxième de la maladie bleue. Un semis, un désherbage et une récolte précoces et l’utilisation de cultivars à cycle court peuvent réduire leurs dégâts. Les punaises du cotonnier (Dysdercus spp.) existent dans tous les pays où pousse le cotonnier. Elles percent la capsule verte et injectent le champignon Nematospora gossypii, qui provoque une coloration jaune des lints, entraînant une moindre qualité. Environ 4 pulvérisations d’organophosphorés et de pyréthrinoïdes en alternance permettent de lutter contre ce ravageur. Une lutte préventive relativement efficace consiste en une lutte phytosanitaire stricte, une culture précoce de maïs ou de sorgho, suivie d’un labour précoce et une plantation de cotonnier rapprochée au moyen d’un cultivar à maturité précoce. Des espèces apparentées aux cotonniers, tels que les Abutilon poussant à proximité, sont des hôtes facultatifs des ravageurs du cotonnier, en particulier les punaises.

Les insectes ravageurs du cotonnier ont été efficacement éliminés depuis 1945 grâce à l’utilisation d’insecticides. L’apparition répétée de résistances des insectes ravageurs (en particulier le ver américain de la capsule) aux nouveaux insecticides a conduit dans quelques pays à des traitements excessifs, atteignant 15 pulvérisations par saison, tuant tous les prédateurs naturels. Ceci peut également provoquer des infestations par des ravageurs qui étaient insignifiants avant, nécessitant des pulvérisations supplémentaires. Pour réduire l’utilisation de produits phytosanitaires, la mise en œuvre d’une gestion intégrée des ravageurs (GIR) ou d’une gestion intégrée des adventices et des ravageurs est recommandée. Une préparation très précoce du champ comprenant un désherbage régulier, l’épandage d’engrais, un semis précoce de cultivars résistants aux cicadelles, un remplissage des vides, un démariage et une utilisation judicieuse des produits phytosanitaires sur la base de la surveillance des insectes et des seuils de nuisibilité, constituent la base des pratiques agricoles qui interagissent dans la gestion intégrée. Un désherbage préventif par labour ou binage juste après l’enlèvement de la culture précédente permet de garder l’humidité d’orages imprévus dans le sous-sol, ce qui autorise un semis précoce. Ceci favorise une fructification précoce bien avant l’apparition du principal ravageur, le ver américain de la capsule, et fournit un délai important pour une fructification compensatoire en cas d’endommagement précoce des fruits. Les insecticides contre les cicadelles n’étant plus nécessaires, ils ne tuent pas les prédateurs naturels qui régulent le ver américain de la capsule pendant son stade jeune et vulnérable. Le temps que les ravageurs ultérieurs, le ver rose du cotonnier, les punaises et l’aleurode, arrivent, la culture principale sera sauvée.

Le nématode le plus important du cotonnier économiquement et le plus diffusé est le nématode à galles (Meloidogyne spp.), alors que le nématode réniforme (Rotylenchus spp.) est plutôt cantonné aux régions tropicales et subtropicales. Gossypium arboreum, Gossypium herbaceum et Gossypium barbadense sont moins sensibles aux nématodes réniformes que Gossypium hirsutum. On peut lutter contre les nématodes par la rotation et l’utilisation de produits chimiques, alors qu’on a mis au point des génotypes de cotonnier dotés d’une certaine tolérance aux nématodes réniformes.

Récolte

En Afrique tropicale, la récolte du coton est généralement effectuée manuellement. Une fois le coton récolté, les tiges doivent être arrachées et brûlées pour prévenir l’accumulation des ravageurs et des maladies.

Rendement

On peut atteindre un rendement en coton-graine de 4 t/ha dans des conditions optimales, mais en pratique il dépasse rarement 2,5 t/ha et le rendement mondial moyen est d’environ 2 t/ha. Dans la plupart des pays d’Afrique tropicale, le rendement est aux alentours de 1 t/ha. Le coton-graine de cultivars primitifs donne 20–25% de fibres après l’égrenage, alors que de bons cultivars de cotonnier “upland” ont un rendement à l’égrenage d’au moins 35% et parfois de plus de 40%. Certains cultivars actuels de Gossypium arboreum et de Gossypium herbaceum, cultivés en Inde et en Chine, donnent aussi jusqu’à 40% de lints.

Traitement après récolte

Les lints du coton sont séparés des graines par égrenage, ce qui peut être effectué à la main (capacité de 2–3 kg de lints/heure) ou par voie mécanique. L’égrenage mécanique peut être effectué avec une égreneuse à scies (capacité de 300 kg de lints/heure) pour les fibres de coton courtes, ou avec une égreneuse à rouleaux plus douce (capacité de 30 kg de lints/heure) pour les types de fibres longues et fines. Dans certains pays africains, tels que le Kenya et l’Ouganda, l’égrenage à rouleaux est commun, même pour les fibres de coton courtes. En Afrique de l’Ouest et en Afrique centrale, l’égrenage manuel peut être effectué en plaçant le coton-graine sur un bloc de bois ou une pierre plate, et en faisant rouler une barre en bois ou en métal au-dessus pour faire sortir les graines. Le taux d’humidité optimal de la fibre pour l’égrenage est de 5–7%. Lorsque le taux d’humidité est plus faible, les fibres sont excessivement endommagées ; lorsqu’il est plus élevé, la quantité de graines cassées est plus élevée.

Ressources génétiques

En Ouzbékistan, l’Insititut d’amélioration du coton, l’Institut de génétique et de biologie végétale expérimentale et l’Université nationale d’Ouzbékistan détiennent ensemble environ 1500 entrées de Gossypium herbaceum. En Russie, l’Institut Vavilov (VIR) de St. Pétersbourg détient environ 300 entrées de Gossypium herbaceum. En Inde, environ 300 entrées de Gossypium herbaceum sont conservées au Central Institute for Cotton Research (CICR) à Nagpur et Coimbatore, et au National Bureau for Plant Genetic Resources (NBPGR) à New Delhi. La collection nationale de ressources génétiques de Gossypium hébergée au Southern Plains Agricultural Research Center (SPARC), à College Station, Texas, Etats-Unis, comprend environ 200 entrées de Gossypium herbaceum, la banque de gènes du Centre de coopération internationale en recherche agronomique pour le développement (CIRAD) à Montpellier, France, 50, et la Banque nationale de gènes d’Iran (INGB) à Gurgan, Iran, environ 40.

Sélection

Jusque dans les années 1930, l’amélioration génétique du cotonnier se limitait à des croisements au sein du groupe diploïde et du groupe tétraploïde. Après quoi, la polyploïdisation des diploïdes a fortement augmenté les opportunités d’amélioration génétique. Les croisements entre les génotypes de l’Ancien Monde et du Nouveau Monde sont devenus importants, en particulier dans la sélection pour la résistance et pour l’obtention de meilleurs cultivars pour les régions d’Asie où Gossypium arboreum et Gossypium herbaceum se cultivent bien, mais pas Gossypium hirsutum. Des cultivars hybrides F1 dotés d’une vigueur hybride considérable pour le rendement ont été créés avec succès. Cependant, les systèmes disponibles de stérilité mâle cytoplasmique sont inadaptés pour la production à grande échelle de graines hybrides, principalement à cause de l’expression incomplète des gènes restaurateurs de fertilité chez les parents mâles. L’utilisation actuelle d’hybrides de cotonnier est limitée à l’Asie du Sud et la Chine, où la production de semences par castration et pollinisation manuelles est économiquement possible grâce au faible coût de la main-d’œuvre.

Les objectifs principaux de l’amélioration génétique du cotonnier, au-delà d’un rendement plus élevé, sont l’insensibilité à la photopériode, la précocité de la maturation, l’adaptation à la récolte mécanique (par une petite taille, peu de ramifications, une période de floraison courte, des graines attachées de manière lâche, des feuilles moins poilues), la qualité des fibres (longueur, finesse, résistance et élasticité), la qualité des graines (forte teneur en huile et faible teneur en gossypol, potentiel amélioré du tourteau en tant que source de protéines pour les humains et les animaux), résistance aux maladies (par ex. le feu bactérien et la fusariose) et aux ravageurs (par ex. vers de la capsule, cicadelles) et tolérance à la sécheresse, au froid et à la salinité. Peu de progrès ont été réalisés dans l’amélioration génétique concernant la résistance aux ravageurs (sauf pour la résistance aux cicadelles), mais un plus grand succès a été obtenu en matière de résistance et de tolérance à la fusariose et à la verticilliose, au feu bactérien et aux nématodes.

Bien que Gossypium herbaceum soit encore cultivé dans un nombre considérable de pays, on ne trouve qu’en Inde des programmes structurés d’amélioration génétique de cette espèce. Les programmes d’amélioration génétique en Inde ont pour objectif d’améliorer le potentiel de rendement et la qualité des fibres. Gossypium herbaceum est utilisé dans des études génétiques et biotechnologiques dans de nombreux laboratoires dans le monde, principalement comme géniteur pour améliorer le cotonnier tétraploïde par introgression, en particulier pour la résistance aux maladies et la tolérance aux insectes.

Perspectives

Le coton restera très important à l’échelle mondiale, en raison des excellentes propriétés de ses fibres et de son bas prix, mais Gossypium hirsutum et Gossypium barbadense resteront les espèces principales. Le rôle de Gossypium herbaceum restera marginal, malgré sa tolérance à la sécheresse, au feu bactérien et à plusieurs ravageurs. Il restera important, toutefois, dans l’amélioration génétique de Gossypium hirsutum et de Gossypium barbadense.

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Sources de l'illustration

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Auteur(s)

  • L. Jimu

Forestry Unit, Department of Environmental Science, Bindura University of Science Education (BUSE), P.B. 1020, Bindura, Zimbabwe

Citation correcte de cet article

Jimu, L., 2011. Gossypium herbaceum L. [Internet] Fiche de PROTA4U. Brink, M. & Achigan-Dako, E.G. (Editeurs). PROTA (Plant Resources of Tropical Africa / Ressources végétales de l’Afrique tropicale), Wageningen, Pays Bas. <http://www.prota4u.org/search.asp>.

Consulté le 16 juillet 2021.


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